Diagnóstico microbiológico en lavado broncoalveolar. Revisión de la literatura

Página creada Hermosa Punsola
 
SEGUIR LEYENDO
Diagnóstico microbiológico en lavado broncoalveolar. Revisión de la literatura
Artículo de revisión

         Diagnóstico microbiológico en lavado broncoalveolar.
                       Revisión de la literatura
    Microbiological diagnosis in bronchoalveolar lavage. Literature review

          Carlos Manuel Alzate-Rincón1, Natalia Loaiza-Díaz2                                , Yudy Aguilar3

Resumen. El lavado broncoalveolar (LBA) se describió hace aproximadamente 50
años, y desde ese momento se ha venido empleando cada vez con más frecuencia,
llegando a ser uno de los métodos de elección para hacer el diagnóstico micro-
biológico de las infecciones respiratorias bajas, pues facilita la identificación de
patógenos oportunistas y no oportunistas. Su uso se incrementó paralelamente
con el número de pacientes inmunocomprometidos, sobre todo a causa del SIDA
y los trasplantes, situaciones en las que con frecuencia los pacientes padecen in-
fecciones pulmonares por gérmenes oportunistas. El LBA es un procedimiento
seguro que permite obtener muestras que aportan información amplia de las ca-
racterísticas celulares y microbiológicas del tracto respiratorio inferior. Para garan-
tizar su utilidad es fundamental que la recolección, transporte, almacenamiento y
procesamiento de las muestras sean óptimos. El análisis de las muestras se hace
por técnicas convencionales para identificación de microorganismos, como son
las tinciones y el aislamiento en medios de cultivo, y por otros métodos tales como
la inmunofluorescencia, pruebas inmunológicas para la detección de antígenos y
anticuerpos, y pruebas de biología molecular. En la presente revisión, se hace una
actualización sobre el procedimiento de obtención, almacenamiento y transporte
de las muestras de LBA, así como de las técnicas de diagnóstico microbiológico
más utilizadas para identificar los principales agentes infecciosos asociados con
enfermedades del tracto respiratorio inferior.

Palabras clave: lavado broncoalveolar, diagnóstico, microorganismos, infecciones
bacterianas y micosis, micobacterias, colorantes, infecciones respiratorias.

¹ Estudiante de Microbiología y Bioanálisis, Universidad de Antioquia. Medellín, Colombia. E-mail: carlosmalzate1@gmail.com.
² Médica, Especialista en Microbiología y Parasitología. Jefe de Patología Clínica, Laboratorio Clínico Hematológico. Mede-
llín, Colombia.
³ Bacterióloga y Laboratorista Clínica. Grupo Investigador de Problemas en Enfermedades Infecciosas (GRIPE), Facultad de
Medicina, Universidad de Antioquia. Clínica Universitaria Bolivariana, Universidad Pontificia Bolivariana. Medellín, Colombia.

Conflicto de interés: los autores declaran que no tienen conflicto de interés.
Medicina & Laboratorio 2021;25:675-693. https://doi.org/10.36384/01232576.523.
Recibido el 18 de mayo de 2021; aceptado el 11 de septiembre de 2021. Editora Médica Colombiana S.A., 2021©.

     Volumen 25, Número 4, 2021                                                                                         675
Diagnóstico microbiológico en lavado broncoalveolar. Revisión de la literatura
Alzate-Rincón CM, Loaiza-Díaz N, Aguilar Y

Abstract. Bronchoalveolar lavage (BAL) was described approximately 50 years ago
and since then it has been used with increasing frequency, becoming one of the
methods of choice for making the microbiological diagnosis of lower respiratory
infections, as it facilitates the identification of opportunistic and non-opportunistic
pathogens. Its use increased in parallel with the number of immunocompromised
patients, especially due to AIDS and transplantation, situations in which patients
frequently suffer from lung infections due to opportunistic germs. BAL is a safe pro-
cedure that allows obtaining samples that provide comprehensive information on
the cellular and microbiological characteristics of the lower respiratory tract. Opti-
mal collection, transport, storage and processing of samples is essential to guaran-
tee its usefulness. Analysis of the samples is done both by conventional techniques
for the identification of microorganisms, such as staining and isolation in culture
media, as well as by other methods such as immunofluorescence, immunological
tests for the detection of antigens and antibodies, and molecular biology assays.
In this review, an update in presented on the procedure for obtaining, storing and
transporting BAL samples, as well as on the most widely used microbiological di-
agnostic techniques to identify the main infectious agents associated with lower
respiratory tract diseases.

Keywords: bronchoalveolar lavage, diagnosis, microorganisms, bacterial infec-
tions and mycoses, mycobacteria, staining, respiratory infections.

Introducción                                 al estado inmunológico del pacien-
                                             te, la sospecha clínica, la afectación
El lavado broncoalveolar (LBA) es un         pulmonar, el procedimiento de toma,
procedimiento invasivo, de fibrobron-        transporte y almacenamiento de la
coscopia, bien tolerado en la mayoría        muestra, el patógeno causante de la
de los pacientes, que fue popularizado       infección y la técnica usada para su
en 1974 por los médicos estadouni-           detección [2]. Encontrar el patógeno
denses Reynolds y Newban [1], debido         involucrado en la infección, apoya el
a su utilidad para definir el diagnóstico    uso adecuado de antibióticos, dismi-
de enfermedades del tracto respirato-        nuyendo el riesgo de eventos tóxicos
rio inferior, tanto infecciosas como in-     por medicamentos, y los fallos tera-
tersticiales y tumorales, ya que permite     péuticos debidos a la presencia de
obtener una muestra con adecuada             mecanismos de resistencia en los mi-
representatividad celular, bioquímica y      croorganismos [3].
de microorganismos, para su posterior
análisis en el laboratorio [2]. Este pro-    El objetivo de esta revisión es descri-
cedimiento ha cobrado importancia en         bir el procedimiento de obtención,
las últimas décadas, debido al incre-        almacenamiento y transporte de
mento de las patologías pulmonares           muestras de LBA, así como las prin-
en pacientes inmunocomprometidos.            cipales técnicas disponibles para el
                                             diagnóstico microbiológico de los
La sensibilidad y especificidad diag-        agentes infecciosos frecuentemente
nóstica del LBA pueden acercarse al          asociados con enfermedad del tracto
100%, sin embargo, varían de acuerdo         respiratorio inferior.

676                                                      Volumen 25, Número 4, 2021
Diagnóstico microbiológico en lavado broncoalveolar. Revisión de la literatura
Diagnóstico microbiológico en lavado broncoalveolar. Revisión de la literatura

                                                                                  Broncoscopio
La muestra                                                                           flexible

El LBA es una muestra del tracto respi-
ratorio bajo, que implica la instilación
de solución salina estéril y su posterior
                                                                         Jeringa con
extracción, en uno o varios segmentos                                   solución salina
pulmonares. El procedimiento para to-
mar esta muestra es invasivo, y se lleva
a cabo con ayuda de un fibrobroncosco-
pio, que se ubica en los bronquios sub-
segmentales, seleccionados de acuerdo
con los hallazgos imagenológicos del
paciente. Una vez ubicado el sitio, se ins-
tilan entre 150 mL y 200 mL de solución
salina isotónica (0,9%) estéril a tempera-                                       Recipiente
                                                                                 recolector
tura ambiente, en fracciones de 20 mL a                                           del LBA
50 mL en adultos. En los niños, algunos
autores recomiendan de 10 mL a 20 mL
independiente de la edad y tamaño del
niño, pero hay otros que sugieren instilar
                                                 Figura 1. Procedimiento de lavado bron-
1 mL a 3 mL/kg, y si pesa más de 50 kg,
                                                 coalveolar.
hacer 3 instilaciones de 50 mL [2].

Después de cada instilación, se debe
aspirar con una presión suave de 20 cm           los signos vitales y la oximetría. Si bien
H2O, con el fin de evitar un colapso bron-       durante la fibrobroncoscopia se pue-
quial, para que al final del procedimiento       den presentar complicaciones como
se pueda recuperar aproximadamente               hemoptisis, neumotórax y saturación
entre el 30% al 50% del volumen instila-         de O2
Diagnóstico microbiológico en lavado broncoalveolar. Revisión de la literatura
Alzate-Rincón CM, Loaiza-Díaz N, Aguilar Y

de Microbiología [8], una vez recolecta-      ración del 10% del volumen instilado
da la muestra de LBA, se debe conservar       durante la broncoscopia en niños, y del
en el triple embalaje para transporte de      30% en adultos, así como que al hacer
sustancias de riesgo biológico. Lo ideal      el recuento celular diferencial en co-
es procesar la muestra en el laboratorio      loraciones como Wright o Giemsa, se
en el transcurso de las primeras dos ho-      observen escasas células epiteliales;
ras tras su recolección. Cuando esto no       menos del 1% [2,5]
es posible, se debe conservar a 4 °C has-
ta 24 horas para favorecer la viabilidad      Inicialmente, es importante valorar el
celular [2], o usar aditivos dependiendo      aspecto macroscópico de la muestra,
del germen y prueba a realizar.               color, turbidez y presencia de moco. El
                                              color puede variar desde transparente
Las muestras para cultivo bacteriológi-       blanquecino por moco, hasta rosa a rojo
co y análisis microscópico [9] deben ser      debido a la presencia de sangre. Cuan-
almacenadas durante 24 horas a 4 °C,          do se centrifuga la muestra, el botón ce-
máximo 48 horas, sin que se afecte la         lular puede tener un color blanco o más
sensibilidad analítica para la gran mayo-     oscuro, o incluso alcanzar un tono café a
ría de las bacterias patógenas y hongos.      negro en los pacientes que fuman.
Si se requiere cultivo viral, la muestra
debe transferirse a un medio de trans-        Para establecer la calidad de la mues-
porte especial para virus que contiene        tra, Chamberlain y colaboradores pro-
DMSO (dimetilsulfóxido) y proteínas           ponen la evaluación microscópica [12]
como la albúmina bovina, para evitar el       que se basa en el recuento celular de
daño celular por la cristalización, ade-      células epiteliales, macrófagos, eritro-
más de estabilizadores de pH y antimi-        citos y artefactos, y que considera que
crobianos como gentamicina y anfote-          una muestra de LBA es representativa
ricina B, para minimizar el crecimiento       del tracto respiratorio inferior cuando
microbiano en la muestra [10].                contiene
Diagnóstico microbiológico en lavado broncoalveolar. Revisión de la literatura
Diagnóstico microbiológico en lavado broncoalveolar. Revisión de la literatura

Técnicas de diagnóstico                           su costo-beneficio, y a que los materia-
microbiológico en LBA                             les, colorantes y el microscopio de luz,
                                                  hacen parte de los elementos básicos
                                                  de un laboratorio. En contraste, su ren-
Examen directo                                    dimiento diagnóstico depende en gran
                                                  medida del entrenamiento del personal
La preparación en fresco es útil para eva-        que realiza el proceso, en especial la vi-
luar la presencia de parásitos como lar-          sualización microscópica.
vas de Strongyloides stercolaris o huevos
de Paragonimus spp. [19,20]. También              Usualmente, las tinciones se realizan a
se pueden observar estructuras fúngicas           partir del botón celular obtenido del
de levaduras, hifas o pseudohifas sin co-         proceso de centrifugación de la mues-
lorantes, o resaltarlas con coloraciones          tra total, pero el rendimiento diagnósti-
simples como el azul de lactofenol, KOH           co mejora cuando el procesamiento se
o tinta china. Esta última es empleada            hace por citocentrifugación.
para ver las levaduras capsuladas de
Cryptococcus neoformans (figura 2) [21].          Tinción de Gram

                                                  La coloración de Gram es útil en el
Tinciones                                         diagnóstico presuntivo de infecciones
                                                  bacterianas, y brinda información al clí-
Las tinciones microbiológicas usadas              nico para definir o ajustar el tratamiento
rutinariamente por más de 100 años                inicial, en especial en los casos de neu-
[22], aún se emplean de manera rutina-            monía asociada a ventilación mecánica
ria para identificar el agente causante           (NAV) o neumonía adquirida en la co-
de la infección o, según las estructuras          munidad (NAC), en los que se pueden
observadas, brindar un informe prelimi-           visualizar morfotipos asociados a ciertas
nar para que el médico tome decisio-              bacterias Gram positivas (Streptococcus
nes y defina o ajuste la terapia empírica.        pneumoniae, Haemophilus influenzae,
Tienen la ventaja de estar al alcance de          Staphylococcus aureus) (figura 3), así
todos los laboratorios clínicos, debido a         como Gram negativas (enterobacterias
                                                  y bacilos Gram negativos no fermenta-
                                                  dores). Tiene una sensibilidad que osci-
                                                  la entre 44% y 90%, y una especificidad
                                                  entre 49% y 100%, siendo mayor su con-
                                                  cordancia con el cultivo cuando se ob-
                                                  servan bacterias intracelulares [23,24].

                                                  En esta coloración también es posi-
                                                  ble observar estructuras filamentosas
                                                  Gram positivas sugestivas de Nocar-
                                                  dia spp., y de hongos como las hifas o
                                                  blastoconidias de Candida spp., que
                                                  también se tiñen Gram positivas. La
                                                  presencia de estas últimas se debe
Figura 2. Preparación de LBA en tinta china       interpretar cuidadosamente, pues es
(40x). En el campo se observan las blastoconi-    posible que correspondan a contami-
dias capsuladas de Cryptococcus neoformans.       nación de la muestra con microorga-
Fuente: GRIPE, Universidad de Antioquia.          nismos de la orofaringe [25].

   Volumen 25, Número 4, 2021                                                                 679
Diagnóstico microbiológico en lavado broncoalveolar. Revisión de la literatura
Alzate-Rincón CM, Loaiza-Díaz N, Aguilar Y

                    BF

                                             CGP

          CGP
                                  M

                                                                         BAAR

                                                   PMN

Figura 3. Tinción de Gram de muestra de
LBA (100x). En el campo se observan macró-
fagos (M), neutrófilos (PMN), bacterias fila-
mentosas (BF) y cocos Gram positivos (CGP).
                                                         Figura 4. Coloración de Ziehl Neelsen de
Fuente: GRIPE, Universidad de Antioquia.
                                                         LBA (100x). Se observan las células del LBA
                                                         y BAAR atípicas. Fuente: GRIPE, Universi-
                                                         dad de Antioquia.
En el Gram del LBA se debe reportar
la cantidad de bacterias observadas
como escasa, moderada o abundante,                       diagnóstico mayor que en otras mues-
no se cuantifican los leucocitos, pues                   tras respiratorias, en especial en pacien-
en contraste a otras muestras como el                    tes cuyo cuadro clínico es muy sugesti-
esputo, su presencia no indica reacción                  vo de tuberculosis, pero no expectoran
inflamatoria. Lo normal es que haya ma-                  [28,29]. Su utilidad se extiende al segui-
crófagos alveolares en el LBA, sin em-                   miento microbiológico de los pacientes
bargo, algunos autores han reportado                     que reciben tratamiento para la tuber-
aumento en el porcentaje de neutrófi-                    culosis y, si bien es una prueba de bajo
los al hacer el recuento diferencial, aso-               costo, rápida ejecución y que brinda
ciado a las neumonías bacterianas [24].                  resultados en pocas horas, está siendo
                                                         reemplazada por técnicas de biología
Tinción de Ziehl Neelsen                                 molecular como la RT-PCR (del inglés,
                                                         Real Time Polymerase Chain Reaction),
La coloración de Ziehl Neelsen (ZN) es                   pues su rendimiento depende de la
una tinción diferencial que permite vi-                  concentración de bacilos en la muestra
sualizar bacterias ácido-alcohol resisten-               (>10.000 micobacterias por mL) y de la
tes (BAAR), teñidas de color rojo en un                  experticia del observador; aspectos que
fondo azul, gracias a la reacción química                influyen en la baja sensibilidad reporta-
de los ácidos micólicos de las BAAR y                    da para el ZN (entre el 45% y el 80%), en
de la fucsina básica (figura 4) [26]. Esta               comparación con el cultivo (entre el 70%
es una característica de los complejos                   y el 90%) [30], y algunas pruebas de RT-
taxonómicos Mycobacterium tuberculo-                     PCR que se acercan al 100% [31].
sis y Mycobacterium avium, patógenos
pulmonares y extrapulmonares en pa-                      Tinción de Ziehl Neelsen modificado
cientes inmunosuprimidos [27].
                                                         También conocida como tinción de
La tinción de ZN se emplea para hacer                    Kinyoun modificada (cambia el alcohol
el diagnóstico de tuberculosis pulmonar                  ácido por ácido sulfúrico al 1%), permite
(TB), y en el LBA tiene un rendimiento                   visualizar de color rojo las bacterias que

680                                                                  Volumen 25, Número 4, 2021
Diagnóstico microbiológico en lavado broncoalveolar. Revisión de la literatura
Diagnóstico microbiológico en lavado broncoalveolar. Revisión de la literatura

son parcialmente ácido-alcohol resis-
tentes, entre las cuales se encuentra No-
cardia spp. (figura 5). Esta coloración se                                              CEB
hace para confirmar el diagnóstico de
nocardiosis pulmonar cuando hay sos-
                                                          E
pecha clínica, o se visualizan sus formas
filamentosas en el Gram o en el ZN. Esta                       PMN           CEB
patología cursa con un cuadro clínico
inespecífico, que afecta a pacientes con
inmunosupresión severa y llega a cau-
                                                  Figura 6. Celularidad en LBA con colora-
sar neumonía necrotizante grave; de ahí
                                                  ción de Wright (100x). Se observan las cé-
la importancia y oportunidad de utilizar          lulas epiteliales escamosas (E) del epitelio
el ZN modificado en el LBA [32,33].               bronquial (CEB), y neutrófilos (PMN). Fuen-
                                                  te: GRIPE, Universidad de Antioquia.
Giemsa-Wright-RAL

Estas tres coloraciones emplean reacti-
vos que tiñen diferencialmente el con-                    M
tenido básico y ácido de las células,
permitiendo obtener una gama de co-                                          H
lores en las estructuras celulares, que
permite diferenciar por la composición
química, el citoplasma y el núcleo. Por                                                M

lo tanto, uno de sus usos es el recuento
celular relativo del LBA (figura 6), y el
otro es detectar hongos como las le-
vaduras intracelulares de Histoplasma
capsulatum con su característica retrac-
ción del núcleo (figura 7) [34-36], las           Figura 7. Coloración de Wright (100x) con
                                                  levaduras intracelulares de H. capsulatum
formas tróficas de “panal de abejas”
                                                  (H) y macrófagos alveolares (M). Fuente:
                                                  GRIPE, Universidad de Antioquia.

                                                  de Pneumocystis jirovecii, y en algunas
                                                  ocasiones permite visualizar hifas o le-
                                                  vaduras extracelulares de C. neoformas
                                                  o Candida spp. Estos hongos hacen
                                                  parte del diagnóstico diferencial del
                                                  cuadro infeccioso pulmonar en pacien-
                                                  tes inmunosuprimidos [37].

                                                  Plata metenamina de Gomori-Grocott
                                                  y azul de toluidina (TBO)
Figura 5. Ziehl Neelsen modificado (100x).
Se observan los filamentos de color rojo ca-      Estas tinciones en muestras de LBA, se
racterísticos de Nocardia spp. y células pro-     usan para visualizar estructuras fúngi-
pias del LBA. Fuente: GRIPE, Universidad          cas como parte del estudio diagnóstico
de Antioquia.                                     en cuadros respiratorios bajos de pa-

   Volumen 25, Número 4, 2021                                                                 681
Diagnóstico microbiológico en lavado broncoalveolar. Revisión de la literatura
Alzate-Rincón CM, Loaiza-Díaz N, Aguilar Y

cientes con neoplasias hematológicas,
trasplantados, o inmunosuprimidos por
causa primaria o secundaria. Los reac-
tivos empleados en la coloración de
plata metenamina tiñen los hongos al
oxidar los polisacáridos de la pared ce-
lular y se convierten en aldehídos que
reaccionan con la plata, y adquieren to-
nalidad café o negra [38]. Esta tinción
                                              Figura 8. Estructuras fúngicas en colora-
es inespecífica al unirse a las paredes
                                              ción de TBO correspondientes a esporo-
de todos los hongos, así que la dife-         quistes de P. jirovecii (100x). Fuente: GRIPE,
renciación de las estructuras fúngicas        Universidad de Antioquia.
y de los tipos de levadura propios de
cada hongo, depende del buen entre-
namiento del microscopista. Por ejem-
plo, en presencia de H. capsulatum, se
observan levaduras pequeñas de color
marrón oscuro, por la precipitación de
los iones de plata de la plata metena-
mina [39,40]; también se facilita la ob-
servación de las hifas hialinas, septadas,
con ramificación dicotómica en ángulo
de 45° de Aspergillus spp. [41].

Por otra parte, el TBO es una coloración
metacromática que tiñe los proteoglica-
nos de la pared de las levaduras y hon-
gos, además, es más fácil de realizar que     Figura 9. Estructuras fúngicas en colora-
la plata metenamina y posee una sensi-        ción de TBO correspondientes a levaduras
bilidad similar a la de la inmunofluores-     capsuladas de C. neoformans (100x). Fuen-
cencia. Se usa principalmente para P.         te: GRIPE, Universidad de Antioquia.
jirovecii donde tiñe los esporoquistes,
cuya apariencia es de gránulos, de to-
nalidad azul-lila, ovalados, con una hen-     simplex (VHS). Adicionalmente, se ha
didura central, que se agrupan en forma       utilizado para el diagnóstico de infec-
de panal [42] (figura 8), pero también se     ciones por hongos como Pneumocystis
pueden observar otras levaduras como          jirovecii y especies de Aspergillus [27].
las multigemantes de P. braziliensis, y le-   Esta tinción también permite distinguir
vaduras unigemantes polimórficas y de         los componentes acidófilos y basófilos
doble pared de C. neoformans (figura          de las células, además de evidenciar
9), por lo cual su rendimiento diagnós-       un patrón de cromatina detallado, ya
tico también recae en la experticia del       que tiñe el citoplasma de las células
laboratorio que la realiza.                   metabólicamente activas [43].

Papanicolaou
                                              Cultivo
La tinción de Papanicolaou en el LBA se
emplea para buscar efectos citopáticos        El desarrollo de neumonía depende
causados por virus como los herpes            tanto de la virulencia del germen, como

682                                                         Volumen 25, Número 4, 2021
Diagnóstico microbiológico en lavado broncoalveolar. Revisión de la literatura

del sistema inmune del huésped. En la            género es indispensable, y se apoya en
neumonía bacteriana clínicamente ma-             las características macroscópicas de las
nifiesta, la concentración de bacterias          colonias, el aspecto morfológico de las
debe ser al menos de 104 UFC/g de te-            cabezas conidiales [45], la prueba de
jido o 105 UFC/mL de exudado respira-            termotolerancia a 50 °C, o en técnicas
torio. El cultivo cuantitativo tiene como        de espectrometría de masas como el
objetivo diferenciar las bacterias de la         MALDI-TOF. La detección y cuantifica-
microbiota orofaríngea que contaminan            ción de galactomanano, un antígeno
la muestra y que están presentes en me-          de pared celular específico de las es-
nor cantidad (concentraciones inferiores         pecies de Aspergillus spp. en suero o
a 104 UFC/mL), de las bacterias poten-           LBA, es útil para el diagnóstico y segui-
cialmente patógenas presentes en con-            miento de la aspergilosis invasiva [46].
centraciones superiores (105 UFC/mL a
106 UFC/mL). En el estudio diagnóstico
de la NAV por LBA, el punto de corte es          Técnicas inmunológicas
el recuento bacteriano igual o superior
a 104 UFC/mL, cuya sensibilidad es del           Detección de antígenos y anticuerpos
42% al 93% (media de 73%) y la especifi-
cidad del 45% al 100% (media del 82%).           La detección de antígenos o anticuer-
Los resultados varían según la población         pos puede hacerse por diferentes mé-
estudiada, el uso previo de antibióticos,        todos, como la inmunofluorescencia,
el estado inicial del paciente, etc. [16].       la inmunocromatografía y las técnicas
                                                 inmunoenzimáticas. En la inmunofluo-
Ante la sospecha de infección por M. tu-         rescencia se evalúa la presencia de an-
berculosis complex (MTC), o en la toma           tígenos en tejidos o células, gracias a
de muestras de LBA en pacientes con              la combinación de anticuerpos especí-
inmunosupresión de cualquier origen,             ficos marcados con sondas fluorescen-
se debe hacer cultivo de MTC asociado            tes o fluoróforos. En muestras de LBA,
a una prueba molecular de reacción en            la inmunofluorescencia ha demostrado
cadena de la polimerasa (PCR), para la           tener utilidad en el diagnóstico de in-
detección e identificación de la mico-           fecciones por virus respiratorios, Pneu-
bacteria y la detección simultánea de            mocystis jirovecii (figura 10) [47], Legio-
genes de resistencia a fármacos emplea-          nella spp. [48], micobacterias atípicas,
dos en la terapia para la tuberculosis ini-      especies de Aspergillus [49] y citome-
cial (rifampicina e isoniazida); esta última     galovirus [50], entre otros. Por su parte,
disminuye notablemente el tiempo de              las técnicas inmunoenzimáticas son de
respuesta de 8 semanas a días u horas,           particular utilidad para el diagnóstico
y mejora la sensibilidad diagnóstica [30].       de histoplasmosis y aspergilosis en pa-
                                                 cientes inmunocomprometidos [51,52].
El procesamiento de muestras de LBA
para diagnóstico de aspergilosis pul-            La inmunocromatografía (ICT) también
monar incluye la concentración de la             permite la búsqueda de antígenos o
muestra, y posterior siembra del sedi-           anticuerpos, mediante el uso de una
mento en agar Sabouraud dextrosa,                membrana de nitrocelulosa donde
infusión cerebro-corazón (BHI) y agar            ocurre la reacción antígeno-anticuerpo
PDA con gentamicina y cloranfenicol.             por capilaridad. Se usa en muestras de
La incubación se debe hacer a dos                LBA para buscar infecciones por bacte-
temperaturas, 30 °C y 37 °C, mínimo              rias como Streptococcus pneumoniae
por 72 horas [44]. La identificación del         [53] o en aspergilosis [54].

   Volumen 25, Número 4, 2021                                                                683
Alzate-Rincón CM, Loaiza-Díaz N, Aguilar Y

                                                bajos de estas células se asocian con
                                                incremento en la morbimortalidad [58].

        EQ
                                                Técnicas de biología molecular

                                                Técnicas de ADN

                                        T       La PCR, junto con otras técnicas utili-
                                                zadas en microbiología, como la PCR
                                                acoplada a espectrometría de masas
                                                (PCR/ESI-MS), han cobrado mucha im-
Figura 10. Inmunofluorescencia directa          portancia en la identificación rápida de
donde se observan las formas tróficas (T) y     agentes infecciosos en el LBA [59,60],
esporoquistes (EQ) de P. jirovecii de color     especialmente en pacientes inmuno-
verde, sobre un fondo rojo correspondien-       comprometidos que están expuestos
te a las células del LBA (100x). Fuente: GRI-   a infecciones por una variedad amplia
PE, Universidad de Antioquia.
                                                de microorganismos, que no exhiben
                                                signos y síntomas comunes, y en quie-
                                                nes el inicio de la terapia antimicrobia-
Citometría de flujo                             na adecuada es vital.

Es un método cuantitativo utilizado en          Las técnicas de PCR tienen ventajas im-
inmunología, hematología, oncología,            portantes frente a los cultivos y otros
anatomía patológica y biología celular,         métodos diagnósticos convencionales,
que permite el estudio de característi-         como su mayor sensibilidad, especifi-
cas fenotípicas de las células, como la         cidad y reproducibilidad, y su rapidez,
granularidad, el tamaño y la expresión          ya que no siempre se requiere esperar
de receptores específicos de membra-            a que el microorganismo se reproduz-
na, mediante el uso de marcadores               ca; también, la facilidad que ofrece
fluorescentes que se unen a las célu-           la PCR multiplex para detectar varios
las, permitiendo diferenciar subpobla-          microorganismos en una sola corrida,
ciones [55,56].                                 que pueden ser de diferente género, o
                                                de cuantificar la carga viral cuando se
En el LBA, la citometría de flujo permite       requiera mediante una PCR en tiempo
la detección de microorganismos (bac-           real o qPCR. Su principal desventaja
terias, virus y hongos), al igual que su        frente al cultivo tradicional es que, de-
respuesta a los diferentes fármacos y           bido a su fundamento, no se puede
citotoxicidad. Además, ha demostrado            determinar la expresión fenotípica de
utilidad en la cuantificación de subpo-         genes de resistencia bacteriana o fún-
blaciones de linfocitos, como los CD8+          gica que los microorganismos pueden
y CD4+ en pacientes que padecen cier-           portar, pero no siempre expresar [61].
tas infecciones. Es útil en el diagnóstico
y seguimiento de algunos pacientes,             Actualmente, aunque en pocos labora-
como ocurre en las personas infecta-            torios de diagnóstico clínico, se dispone
das con el VIH (virus de la inmunodefi-         de la secuenciación del genoma com-
ciencia humana) [57], y recientemente           pleto de los agentes infecciosos en el
en los infectados con el SARS-CoV-2             LBA; técnica que se usa en el diagnós-
(COVID-19), en quienes recuentos muy            tico, control y tratamiento de infecciones

684                                                         Volumen 25, Número 4, 2021
Diagnóstico microbiológico en lavado broncoalveolar. Revisión de la literatura

fúngicas, bacterianas y virales, en pacien-          con COVID-19, el LBA puede confir-
tes críticos con o sin deficiencia inmune            mar este diagnóstico, no obstante, se
[62,63]. Incluso, se han hecho estudios              sabe que su identificación depende
empleando la técnica de secuenciación                de la concentración del virus en la
en shotgun del microbioma pulmonar,                  muestra [67].
en pacientes con enfermedades respira-
torias crónicas y en receptores de tras-             En la tabla 1 se describen los principa-
plantes pulmonares [51,64,65].                       les agentes infecciosos que es posible
                                                     identificar con técnicas de diagnóstico
La técnica de reacción en cadena de la               molecular, en muestras de LBA.
polimerasa con transcripción inversa
(RT-PCR) realizada en muestras de LBA                Determinación del microbioma
para identificar el SARS-CoV-2, se con-              pulmonar en el LBA
sidera muy precisa, y se recomienda si
es realizada por un operador experto,                El sistema respiratorio no es un sitio
ya que implica un mayor riesgo de ex-                anatómico estéril, allí se encuentran
posición [66]. En casos de hisopados                 una amplia variedad de microorganis-
nasofaríngeos negativos en pacientes                 mos encargados de mantener el balan-

Tabla 1. Diagnóstico molecular de agentes infecciosos en muestras de lavado broncoalveolar (LBA)

                              Detección del                    Técnica         Algunos estuches
Agente
                             microorganismo                  diagnóstica          comerciales

                                                 Virus

                     La qPCR tiene alta especificidad                         Adenovirus R-GENE®
                                                          qPCR
Adenovirus           y sensibilidad, pero cualquier                           BioMérieux BioFire®
                                                          qRT-PCR multiplex
                     técnica de PCR es diagnóstica [68]                       FilmArray®

                     Detección por PCR. Muestras de                           RealStar® MERS-CoV
Coronavirus          LBA tienden a tener mayor carga      RT-qPCR             RT-PCR Kit 1.0
MERS-CoV             viral que las muestras de esputo     qRT-PCR multiplex   BioMérieux BioFire®
                     e hisopados nasofaríngeos [69]                           FilmArray®

                     El LBA no es de rutina, y se hace
                     en pacientes con infección severa                        TaqPath RT-PCR
Coronavirus          e intubación orotraqueal. La         RT-PCR              COVID-19 Kit®
SARS-CoV-2           evaluación de las poblaciones        qPCR multiplex      BioMérieux BioFire®
                     celulares es un indicador de la                          FilmArray®
                     severidad de la enfermedad [67]

                     El LBA es útil cuando el
                                                                              GeneProof® Flu
                     resultado es indeterminado
                                                                              Multiplex PCR Kit
Influenza A-B        en muestras respiratorias            qRT-PCR multiplex
                                                                              BioMérieux BioFire®
                     superiores, además, se puede
                                                                              FilmArray®
                     identificar el subtipo [70]

                                                                              BioMérieux BioFire®
                     Su detección hace el diagnóstico,                        FilmArray®
Virus respiratorio
                     pero cargas virales bajas pueden     qRT-PCR multiplex   Cepheid Xpert® Flu/
sincitial
                     ser falsos positivos [71]                                RSV XC y Xpert®
                                                                              Xpress Flu/RSV

                                                                                           Continúa

   Volumen 25, Número 4, 2021                                                                   685
Alzate-Rincón CM, Loaiza-Díaz N, Aguilar Y

                       Las cargas virales altas en LBA
 Herpes simplex        se asocian con un aumento de                              HSV1, HSV2, VZV
                                                             qPCR
 (HSV-1)               mortalidad en pacientes que                               R-gene®
                       llevan más de 14 días en UCI [72]

                       Se cuantifica la carga viral
                       en plasma por qPCR para
                       el diagnóstico. En muestras
                       respiratorias no se hace de rutina,
                       ya que para demostrar que la
 Citomegalovirus       replicación del CMV es a nivel
                                                             qPCR
 (CMV)                 pulmonar, la carga viral en el
                       LBA debe ser superior a la carga
                       obtenida en lavados faríngeos
                       [73], pero su presencia en LBA
                       parece ser un factor predictor de
                       neumonía por CMV [74]

                                                 Bacterias

                       Detección por PCR del gen 16S                             BIO-RAD® iQ-Check®
 Legionella spp.                                             qPCR
                       [48]                                                      Legionella Real-Time

                       Amplificación y detección por
                                                                                 GeneProof®
                       PCR de los genes del sistema
                                                                                 Mycoplasma
                       de la fosfotransferasa I, la
                                                                                 pneumoniae PCR Kit,
                       citoadhesina P1 y el elemento
 Mycoplasma                                                  qPCR                Seeplex®
                       repetitivo RepMP1 [75]. Hay poca
 pneumoniae                                                  qRT-PCR multiplex   PneumoBacter ACE
                       correlación entre la serología
                                                                                 Detection
                       y la PCR debido a la falta de
                                                                                 BioMérieux BioFire®
                       especificidad de las pruebas
                                                                                 FilmArray®
                       inmunológicas [76]

                                                                                 GeneProof®
                                                                                 Chlamydia
                       El uso en conjunto de la
                                                                                 pneumoniae PCR Kit,
                       determinación de IgM con el
 Chlamydophyla                                               qPCR                Seeplex®
                       resultado de la PCR es la forma
 pneumoniae                                                  qRT-PCR multiplex   PneumoBacter ACE
                       más sensible de diagnosticar la
                                                                                 Detection,
                       infección en niños [77]
                                                                                 BioMérieux BioFire®
                                                                                 FilmArray®

                                                                                 Seeplex®
                       Su detección aumenta con la
                                                                                 PneumoBacter ACE
 Bordetella            PCR, evitando tratamientos            PCR multiplex
                                                                                 Detection
 pertusis              innecesarios, en especial en          qRT-PCR multiplex
                                                                                 BioMérieux BioFire®
                       niños menores de 3 meses [78]
                                                                                 FilmArray®

                       La identificación de la especie
                       puede hacerse por técnicas de
                       MALDI-TOF MS. La PCR detecta                              BioMérieux BioFire®
                       la presencia de la bacteria, pero                         FilmArray®
 Streptococcus         no es posible diferenciar si es       PCR multiplex       Bruker MALDI
 pneumoinae            colonizante o patógena, por lo        MALDI-TOF MS        BiotyperTM
                       que se ha retirado de algunos                             VITEK® MS
                       estuches comerciales. Hay
                       sistemas para diferenciar los
                       subtipos

                                                                                             Continúa

686                                                                    Volumen 25, Número 4, 2021
Diagnóstico microbiológico en lavado broncoalveolar. Revisión de la literatura

                   La identificación de la especie
                   puede hacerse por técnicas de                             Cepheid®
Staphylococcus     MALDI-TOF MS. Se usa PCR para       PCR                   Bruker MALDI
aureus             detectar el género y la presencia   MALDI-TOF MS          BiotyperTM
                   de genes asociados a perfiles de                          VITEK® MS
                   resistencia

                                          Micobacterias

                   La identificación de la especie
                   puede hacerse por técnicas de
                   MALDI-TOF MS. La detección por                            Xpert ® MTB/RIF
                   PCR se usa cuando las tinciones     qPCR                  Seegene® AnyplexTM
Mycobacterium
                   son negativas y paucibacilares,     MALDI-TOF MS          Bruker MALDI
tuberculosis
                   y permite diferenciar entre                               BiotyperTM
                   algunas especies, así como                                VITEK® MS
                   detectar genes de resistencia al
                   tratamiento de primera línea [79]

                                                                             EzplexTM MTBC/NTM
                   La identificación de la especie
                                                                             Real-time PCR Kit
Micobacterias      puede hacerse por técnicas de       qPCR
                                                                             Bruker MALDI
no tuberculosas    MALDI-TOF MS. Detección por         MALDI-TOF MS
                                                                             BiotyperTM
                   qPCR del gen 16S [80]
                                                                             VITEK® MS

                                             Hongos

                   La identificación puede hacerse                           AsperGenius®
                   por técnicas de MALDI-TOF MS                              Species Multiplex y
                   y PCR a partir de cultivos de                             Resistance Multiplex
                                                       qPCR multiplex
Aspergillus spp.   secreciones respiratorias [81].                           Kit
                                                       MALDI-TOF MS
                   La secuenciación del genoma                               Bruker MALDI
                   completo en muestras de LBA es                            BiotyperTM
                   útil [62]                                                 VITEK® MS

                   La detección se realiza por qPCR,
                   sin embargo, no diferencia
                                                                             RealStar®
Pneumocystis       entre pacientes infectados y        qPCR
                                                                             Pneumocystis jirovecii
jirovecii          colonizados. Se recomienda          PCR anidada
                                                                             PCR Kit 1.0
                   acompañar estas pruebas con
                   estudios adicionales [82]

                   La identificación puede hacerse
                   por técnicas de MALDI-TOF
                   MS. La mayoría de métodos
                   para la detección molecular
                   de Histoplasma son In House,
                   no hay disponibilidad de            PCR anidada
                                                                             Bruker MALDI
Histoplasma        kits comerciales [83]. La PCR       PCR multiplex
                                                                             BiotyperTM
capsulatum         anidada permite obtener             PCR semi anidada
                                                                             VITEK® MS
                   resultados más oportunos            PCR convencional
                   y confiables, con una
                   especificidad del 90% al 100%,
                   y una sensibilidad del 100%
                   en muestras embebidas en
                   parafina [40]

PCR: reacción en cadena de la polimerasa; RT-PCR: PCR con transcripción inversa; qPCR: PCR en tiempo
real; MALDI-TOF MS: (Matrix Assisted Laser Desorption/Ionization Mass Spectrometry, en español,
desorción/ionización láser asistida por una matriz con detección de masas por tiempo de vuelo).

   Volumen 25, Número 4, 2021                                                                   687
Alzate-Rincón CM, Loaiza-Díaz N, Aguilar Y

ce fisiológico del huésped, ayudan a         proteínas diferentes, dotándolas del
absorber nutrientes, degradan molécu-        llamado perfil de expresión genética.
las tóxicas, regulan el sistema inmune y     Mediante este tipo de análisis se pue-
ayudan a resistir patógenos, generando       de determinar qué clase de citoquinas
competencia de nutrientes y espacio,         expresan los leucocitos en procesos
dificultando su establecimiento y, por       idiopáticos como en infecciones, y de
lo tanto, sus procesos infecciosos [1,84].   esta manera conocer la respuesta in-
                                             mune que se lleva a cabo y sus pos-
Las técnicas de metagenómica impli-          teriores consecuencias. Por ejemplo,
can el uso de ácidos nucleicos obteni-       en el estudio de Gao y colaboradores
dos de LBA para secuenciamiento, con         [88] encontraron que, en la infección
técnicas de secuenciación de siguien-        por Mycoplasma pneumoniae en ni-
te generación (NGS, por sus siglas en        ños, se da la proliferación de células
inglés, Next Generation Sequencing) y        NK y linfocitos CD8+, sentando las
análisis bioinformáticos especializados,     bases para posteriores estudios que
con el fin de conocer las poblaciones        permitan esclarecer el rol del sistema
de microorganismos (microbioma) o el         inmune en esta infección.
perfil de expresión génica del paciente
(exoma) [85], y determinar el papel que
juegan estas comunidades en el proce-        Conclusión
so de salud y enfermedad [2,86].
                                             El LBA continúa siendo una muestra de
Hay estudios de microbioma pulmonar          gran importancia en el diagnóstico de
en diferentes contextos clínicos para        infecciones respiratorias bajas, espe-
comprender la ecología microbiana            cialmente en pacientes inmunocom-
presente allí. Uno de los fenómenos          prometidos o en ventilación mecánica.
descritos es la disbiosis en enfermeda-      En el análisis es importante valorar la
des como el cáncer y en la infección por     composición celular, microbiológica y
VIH. En el primer caso, la disbiosis se      bioquímica, para mejorar la aproxima-
ocasiona por el aumento de las pobla-        ción diagnóstica y definir de manera
ciones de Veillonella spp. y Megasphae-      oportuna el tratamiento. Con el de-
ra spp. en pacientes con cáncer pulmo-       sarrollo de pruebas adicionales a las
nar [4,87]; y en el segundo caso, se ha      tinciones y cultivo, como son la inmu-
encontrado anellovirus en alta cantidad,     nofluorescencia y las técnicas molecu-
relacionado con disbiosis en los pacien-     lares, la muestra de LBA para el diag-
tes infectados por VIH [64].                 nóstico de enfermedades infecciosas
                                             ha tenido un progreso notable en los
Determinación del transcriptoma              últimos años, que ha permitido llegar
pulmonar en el LBA                           a un diagnóstico certero, o en el peor
                                             de los casos, ha contribuido a orientar
El transcriptoma engloba tanto el con-       en el diagnóstico diferencial; además,
junto de fragmentos de ARN mensa-            algunas de estas pruebas permiten de-
jero que se traducirá posteriormente         tectar el género y especie del agente
en proteínas, así como el ARN no co-         etiológico, así como la presencia de
dificante que no se traduce. Si bien         genes asociados a perfiles de resisten-
todas las células somáticas poseen           cia. No obstante, se debe tener presen-
una secuencia de ADN idéntica, se            te que los resultados siempre deben
distinguen en que expresan genes             interpretarse a la luz del contexto clíni-
diferentes, y por lo tanto, sintetizan       co del paciente.

688                                                      Volumen 25, Número 4, 2021
Diagnóstico microbiológico en lavado broncoalveolar. Revisión de la literatura

Referencias                                                    utilization of the microbiology laboratory for
                                                               diagnosis of infectious diseases: 2018 update
1.   Patel PH, Antoine M, Ullah S. Bronchoalveolar             by The Infectious Diseases Society of America
     lavage. Treasure Island (FL): StatPearls Publis-          and the American Society for Microbiology.
     hing; 2021. Acceso 11 de abril de 2021. Dispo-            Clin Infect Dis 2018;67:e1-e94. https://doi.
     nible en https://www.ncbi.nlm.nih.gov/books/              org/10.1093/cid/ciy381.
     NBK430762/.                                          9.   Sánchez-Romero MI, García-Lechuz Moya
2.   Escribano-Montaner A, Moreno-Galdó A.                     JM, González López JJ, Orta Mira N. Recogi-
     Técnicas fibrobroncoscópicas especiales: lava-            da, transporte y procesamiento general de las
     do broncoalveolar, biopsia bronquial y biopsia            muestras en el laboratorio de Microbiología.
     transbronquial. An Pediatr 2005;62:352-366.               Enferm Infecc Microbiol Clin 2019;37:127-134.
     https://doi.org/10.1157/13073249.                         https://doi.org/10.1016/j.eimc.2017.12.002.
3.   Fagon JY, Chastre J, Domart Y, Trouillet JL,         10. Somoza N, Torà M. Seguridad biológica en la
     Pierre J, Darne C, et al. Nosocomial pneu-                preservación y el transporte de muestras bioló-
     monia in patients receiving continuous me-                gicas obtenidas en el ámbito de las enferme-
     chanical ventilation. Prospective analysis of 52          dades respiratorias y destinadas a la investi-
     episodes with use of a protected specimen                 gación. Arch Bronconeumol 2009;45:187-195.
     brush and quantitative culture techniques. Am             https://doi.org/10.1016/j.arbres.2009.02.001.
     Rev Respir Dis 1989;139:877-884. https://doi.        11. Bergner LM, Orton RJ, da Silva Filipe A,
     org/10.1164/ajrccm/139.4.877.                             Shaw AE, Becker DJ, Tello C, et al. Using
4.   Michavila IA, Núñez NR, Alvarez JL, Sánchez               noninvasive     metagenomics       to     characte-
     MM. Broncoscopia. Técnicas diagnósticas. In:              rize viral communities from wildlife. Mol
     Soto Campos G, ed. Manual de Diagnóstico                  Ecol   Resour    2019;19:128-143. https://doi.
     y Terapéutica en Neumología. 1a ed. Madrid,               org/10.1111/1755-0998.12946.
     España: Asociación de Neumología y Cirugía           12. Chamberlain DW, Braude AC, Rebuck AS. A
     Torácica del Sur (NEMOSUR); 2005. p. 113–124.             critical evaluation of bronchoalveolar lavage.
5.   Cacho-Calvo JB, Meseguer-Peinado MA, Oli-                 Criteria for identifying unsatisfactory speci-
     ver-Palomo A, Puig-de la Bellacasa J. Procedi-            mens. Acta Cytol 1987;31:599-605.
     mientos en Microbiología Clínica. Diagnóstico        13. Ettensohn DB, Jankowski MJ, Duncan PG,
     microbiológico de las infecciones bacterianas             Lalor PA. Bronchoalveolar lavage in the nor-
     del tracto respiratorio inferior. Madrid, España:         mal volunteer subject. I. Technical aspects and
     Sociedad Española de Enfermedades Infeccio-               intersubject variability. Chest 1988;94:275-280.
     sas y Microbiología Clínica; 2007. Acceso 15              https://doi.org/10.1378/chest.94.2.275.
     de marzo de 2021. Disponible en https://www.         14. Davis GS, Giancola MS, Costanza MC, Low
     seimc.org/contenidos/documentoscientificos/               RB. Analyses of sequential bronchoalveolar la-
     procedimientosmicrobiologia/seimc-procedi-                vage samples from healthy human volunteers.
     mientomicrobiologia25.pdf.                                Am Rev Respir Dis 1982;126:611-616.
6.   Fernández-Bussy S, Labarca G, Zagolin M,             15. Thomson        RB,   Jr.   Laboratory       diagno-
     Oyonarte M, Isamit D, Jalilie A, et al. Compli-           sis of respiratory infections. Curr Opin In-
     caciones asociadas a la broncoscopía flexible:            fect   Dis      1999;12:115-119.        https://doi.
     análisis de registro post-procedimiento. Rev              org/10.1097/00001432-199904000-00002.
     Méd Chile 2014;142:299-304.                          16. Jourdain B, Joly-Guillou ML, Dombret MC,
7.   Terkawi RS, Altirkawi KA, Terkawi AS,                     Calvat S, Trouillet JL, Gibert C, et al. Useful-
     Mukhtar G, Al-Shamrani A. Flexible bronchos-              ness of quantitative cultures of BAL fluid for
     copy in children: Utility and complications. Int J        diagnosing nosocomial pneumonia in ventila-
     Pediatr Adolesc Med 2016;3:18-27. https://doi.            ted patients. Chest 1997;111:411-418. https://
     org/10.1016/j.ijpam.2015.12.003.                          doi.org/10.1378/chest.111.2.411.
8.   Miller JM, Binnicker MJ, Campbell S, Carroll         17. Meduri GU, Baselski V. The role of bronchoal-
     KC, Chapin KC, Gilligan PH, et al. A guide to             veolar lavage in diagnosing nonopportunistic

     Volumen 25, Número 4, 2021                                                                               689
Alzate-Rincón CM, Loaiza-Díaz N, Aguilar Y

      bacterial pneumonia. Chest 1991;100:179-190.         28. Acharya B, Acharya A, Gautam S, Ghimire SP,
      https://doi.org/10.1378/chest.100.1.179.                 Mishra G, Parajuli N, et al. Advances in diag-
18. Castella J, Ancochea J, Llorente L, Puzo C, San-           nosis of tuberculosis: an update into molecu-
      chis J, Sueiro A, et al. Lavado broncoalveolar.          lar diagnosis of Mycobacterium tuberculosis.
      Arch Bronconeumol 1997;33:515-526. https://              Mol Biol Rep 2020;47:4065-4075. https://doi.
      doi.org/10.1016/S0300-2896(15)30534-2.                   org/10.1007/s11033-020-05413-7.
19. Norman FF, Chamorro S, Braojos F, López-               29. Ahmad M, Ibrahim WH, Sarafandi SA, Shah-
      Miranda E, Chamorro J, González I, et al.                zada KS, Ahmed S, Haq IU, et al. Diagnostic
      Strongyloides in bronchoalveolar lavage fluid:           value of bronchoalveolar lavage in the subset of
      Practical implications in the COVID-19 era. J            patients with negative sputum/smear and myco-
      Travel Med 2021. https://doi.org/10.1093/jtm/            bacterial culture and a suspicion of pulmonary
      taab114.                                                 tuberculosis. Int J Infect Dis 2019;82:96-101.
20. Fischer PU, Weil GJ. North American parago-                https://doi.org/10.1016/j.ijid.2019.03.021.
      nimiasis: epidemiology and diagnostic strate-        30. Rincón-Caballero OL, Cano-Romero MA, Aris-
      gies. Expert Rev Anti Infect Ther 2015;13:779-           tizábal-Bernal BH. Diagnóstico de tuberculosis
      786. https://doi.org/10.1586/14787210.2015.              pulmonar en lavado broncoalveolar: desempe-
      1031745.                                                 ño de la PCR en comparación con las pruebas mi-
21. González Á, Tobón ÁM. Infecciones micóticas                crobiológicas de rutina. Med Lab 2017;23:475-
      oportunistas en pacientes con VIH/SIDA. Infec-           484. https://doi.org/10.36384/01232576.26.
      tio 2006;10:279-287.                                 31. Sanabria-Delgado EV. Evaluación del des-
22. Decré D, Barbut F, Petit JC. [Role of the micro-           empeño de la prueba Xpert Mtbd/Rif® para la
      biology laboratory in the diagnosis of nosoco-           detección de tuberculosis en un hospital públi-
      mial diarrhea]. Pathol Biol (Paris) 2000;48:733-         co de Bucaramanga. Bogotá D.C.: Universidad
      744.                                                     CES; 2018. Acceso 15 de marzo de 2021. Dis-
23. O'Horo JC, Thompson D, Safdar N. Is the                    ponible en http://repository.urosario.edu.co/
      Gram stain useful in the microbiologic diag-             handle/10336/18047.
      nosis of VAP? A meta-analysis. Clin Infect Dis       32. Trujillo DE, Ortiz S, Pérez O, Cortés CA, Carri-
      2012;55:551-561. https://doi.org/10.1093/cid/            llo JA. Abscesos cerebrales por Nocardia spp.
      cis512.                                                  en una paciente inmunocompetente. Biomédica
24. Rea-Neto A, Youssef NC, Tuche F, Brunkhorst                2020;40:27-33. https://doi.org/10.7705/biome-
      F, Ranieri VM, Reinhart K, et al. Diagnosis of           dica.4925.
      ventilator-associated pneumonia: a systematic        33. Bautista H, Lizarazo J. Nocardiosis diseminada
      review of the literature. Crit Care 2008;12:R56.         en una paciente VIH negativa. A propósito de un
      https://doi.org/10.1186/cc6877.                          caso de difícil tratamiento. Acta Neurol Colomb
25. Papazian L, Klompas M, Luyt CE. Ventilator-                2015;31:267-273.
      associated pneumonia in adults: a narrative          34. Guarner J, Brandt ME. Histopathologic diagno-
      review. Intensive Care Med 2020;46:888-                  sis of fungal infections in the 21st century. Clin
      906.      https://doi.org/10.1007/s00134-020-            Microbiol Rev 2011;24:247-280. https://doi.
      05980-0.                                                 org/10.1128/cmr.00053-10.
26. Corrales-Ramírez LC, Caycedo-Lozano L.                 35. Wheat LJ, Azar MM, Bahr NC, Spec A, Relich
      Principios físicoquímicos de los colorantes utili-       RF, Hage C. Histoplasmosis. Infect Dis Clin North
      zados en microbiología. Nova 2020;18:73-100.             Am 2016;30:207-227. https://doi.org/10.1016/j.
      https://doi.org/10.22490/24629448.3701.                  idc.2015.10.009.
27. Rosati LA, Leslie KO. 6 - Lung infections. In:         36. López CE. Dimorfismo y patogenia de Histo-
      Leslie KO, Wick MR, eds. Practical Pulmonary             plasma capsulatum. Rev Argent Microbiol
      Pathology: A Diagnostic Approach. 2nd ed.                2006;38:235-242.
      Philadelphia: W.B. Saunders; 2011. p. 137-211.       37. Centers for Disease Control and Prevention
      https://doi.org/10.1016/B978-1-4160-5770-                (CDC). Pneumocystis pneumonia. Fungal di-
      3.00006-7.                                               seases. Atlanta, USA: Centers for Disease Con-

690                                                                         Volumen 25, Número 4, 2021
Diagnóstico microbiológico en lavado broncoalveolar. Revisión de la literatura

     trol and Prevention; 2020. Acceso 18 de abril            gi]. Rev Chilena Infectol 2014;31:173-179. https://
     de 2021. Disponible en https://www.cdc.gov/              doi.org/10.4067/s0716-10182014000200008.
     fungal/diseases/pneumocystis-pneumonia/in-           47. Mantadakis E. Pneumocystis jirovecii pneumo-
     dex.html.                                                nia in children with hematological malignan-
38. Rapidmicrobiology. Gomori's methenamine                   cies: Diagnosis and approaches to manage-
     silver staining kit for fungi detection. Ireland:        ment. J Fungi (Basel) 2020;6:331. https://doi.
     Rapid Test Methods Ltd, Sigma-Aldrich Corp;              org/10.3390/jof6040331.
     2010. Acceso 13 de abril de 2021. Disponible         48. Hayden RT, Uhl JR, Qian X, Hopkins MK,
     en https://www.rapidmicrobiology.com/news/               Aubry MC, Limper AH, et al. Direct detection
     gomoris-methenamine-silver-staining-kit-for-             of Legionella species from bronchoalveolar la-
     fungi-detection.                                         vage and open lung biopsy specimens: com-
39. Muñoz CO, Cano LE, González A. Detección                  parison of LightCycler PCR, in situ hybridiza-
     e identificación de Histoplasma capsulatum               tion, direct fluorescence antigen detection,
     por el laboratorio: de los métodos conven-               and culture. J Clin Microbiol 2001;39:2618-
     cionales a las pruebas moleculares. Infectio             2626. https://doi.org/10.1128/jcm.39.7.2618-
     2010;14:s145-s158.                                       2626.2001.
40. Maniscalchi-Badaoui MT, Lemus-Espinoza D.             49. Fernández-Cruz A, Magira E, Heo ST, Evans
     Mecanismos de evasión de Histoplasma capsu-              S, Tarrand J, Kontoyiannis DP. Bronchoalveo-
     latum en los fagocitos. Rev Soc Ven Microbiol            lar lavage fluid cytology in culture-documented
     2006;26:6-13.                                            invasive pulmonary aspergillosis in patients
41. Cuervo-Maldonado SI, Gómez-Rincón JC,                     with hematologic diseases: Analysis of 67 epi-
     Rivas P, Guevara FO. Actualización en aspergi-           sodes. J Clin Microbiol 2018;56. https://doi.
     losis con énfasis en aspergilosis invasora. Infec-       org/10.1128/jcm.00962-18.
     tio 2010;14:131-144. https://doi.org/10.1016/        50. Roży A, Duk K, Szumna B, Skrońska P, Gaw-
     S0123-9392(10)70131-4.                                   ryluk D, Chorostowska-Wynimko J. Effective-
42. Rodiño J, Rincón N, Aguilar YA, Rueda ZV, He-             ness of PCR and immunofluorescence techni-
     rrera M, Vélez LA. Diagnóstico microscópico de           ques for detecting human cytomegalovirus in
     neumonía por Pneumocystis jirovecii en mues-             blood and bronchoalveolar lavage fluid. Adv
     tras de lavado broncoalveolar y lavado orofarín-         Exp Med Biol 2016;921:21-26. https://doi.
     geo de pacientes inmunocomprometidos con                 org/10.1007/5584_2016_246.
     neumonía. Biomédica 1969;31:222-231. https://        51. Davidson KR, Ha DM, Schwarz MI, Chan ED.
     doi.org/10.7705/biomedica.v31i2.307.                     Bronchoalveolar lavage as a diagnostic proce-
43. Raju K. Evolution of Pap Stain. Biomed Res Ther           dure: a review of known cellular and molecular
     2016;3:6. https://doi.org/10.7603/s40730-016-            findings in various lung diseases. J Thorac Dis
     0006-8.                                                  2020;12:4991-5019.
44. Ullmann AJ, Aguado JM, Arikan-Akdagli                 52. Musher B, Fredricks D, Leisenring W, Balajee
     S, Denning DW, Groll AH, Lagrou K, et al.                SA, Smith C, Marr KA. Aspergillus galactoman-
     Diagnosis and management of Aspergillus                  nan enzyme immunoassay and quantitative
     diseases: executive summary of the 2017                  PCR for diagnosis of invasive aspergillosis with
     ESCMID-ECMM-ERS guideline. Clin Microbiol                bronchoalveolar lavage fluid. J Clin Microbiol
     Infect 2018;24 Suppl 1:e1-e38. https://doi.              2004;42:5517-5522. https://doi.org/10.1128/
     org/10.1016/j.cmi.2018.01.002.                           jcm.42.12.5517-5522.2004.
45. Cuenca-Estrella M, Bassetti M, Lass-Flörl C,          53. Jacobs JA, Stobberingh EE, Cornelissen
     Rácil Z, Richardson M, Rogers TR. Detection              EIM, Drent M. Detection of Streptococcus
     and investigation of invasive mould disease. J           pneumoniae antigen in bronchoalveolar lava-
     Antimicrob Chemother 2011;66 Suppl 1:i15-                ge fluid samples by a rapid immunochroma-
     24. https://doi.org/10.1093/jac/dkq438.                  tographic membrane assay. J Clin Microbiol
46. Cruz R. [Laboratory guidelines for diagnosis of in-       2005;43:4037-4040. https://doi.org/10.1128/
     vasive fungal disease caused by filamentous fun-         JCM.43.8.4037-4040.2005.

    Volumen 25, Número 4, 2021                                                                              691
Alzate-Rincón CM, Loaiza-Díaz N, Aguilar Y

54. Scharmann U, Verhasselt HL, Kirchhoff L, Buer             63. Pendleton KM, Erb-Downward JR, Bao Y,
      J, Rath PM, Steinmann J, et al. Evaluation of two           Branton WR, Falkowski NR, Newton DW, et
      lateral flow assays in BAL fluids for the detection         al. Rapid pathogen identification in bacterial
      of invasive pulmonary aspergillosis: A retrospec-           pneumonia using real-time metagenomics. Am
      tive two-centre study. Mycoses 2020;63:1362-                J Respir Crit Care Med 2017;196:1610-1612.
      1367. https://doi.org/10.1111/myc.13176.                    https://doi.org/10.1164/rccm.201703-0537LE.
55. Barrera-Ramírez L, Drago-Serrano M, Pérez-                64. Young JC, Chehoud C, Bittinger K, Bailey
      Ramos J, Sainz Espuñes T, Zamora A, Gómez-                  A, Diamond JM, Cantu E, et al. Viral metage-
      Arroyo F, et al. Citometría de flujo: vínculo en-           nomics reveal blooms of anelloviruses in the
      tre la investigación básica y la aplicación clínica.        respiratory tract of lung transplant recipients.
      Rev Inst Nal Enf Resp Mex 2004;17:42-55.                    Am J Transplant 2015;15:200-209. https://doi.
56. McKinnon KM. Flow cytometry: An overview.                     org/10.1111/ajt.13031.
      Curr Protoc Immunol 2018;120:5.1.1-5.1.11.              65. Schneeberger PHH, Prescod J, Levy L,
      https://doi.org/10.1002/cpim.40.                            Hwang D, Martinu T, Coburn B. Microbiota
57. Alvarez-Barrientos A, Arroyo J, Cantón R,                     analysis optimization for human bronchoal-
      Nombela C, Sánchez-Pérez M. Applications                    veolar lavage fluid. Microbiome 2019;7:141.
      of flow cytometry to clinical microbiology. Cli-            https://doi.org/10.1186/s40168-019-0755-x.
      nical microbiology reviews 2000;13:167-195.             66. Jahromi R, Avazpour A, Jahromi M, Alavi
      https://doi.org/10.1128/CMR.13.2.167.                       J. COVID-19 with positive bronchoalveolar
58. Huang W, Berube J, McNamara M, Sakse-                         lavage fluid but negative nasopharyngeal
      na S, Hartman M, Arshad T, et al. Lympho-                   and oropharyngeal swabs: A case report and
      cyte subset counts in COVID-19 patients: A                  insights. Indian J Case Reports 2020;6:380-
      meta-analysis. Cytometry A 2020;97:772-776.                 382. https://doi.org/10.32677/IJCR.2020.v06.
      https://doi.org/10.1002/cyto.a.24172.                       i07.010.
59. Mok JH, Eom JS, Jo EJ, Kim MH, Lee K, Kim                 67. Baron A, Hachem M, Tran Van Nhieu J, Bot-
      KU, et al. Clinical utility of rapid pathogen               terel F, Fourati S, Carteaux G, et al. Bron-
      identification using matrix-assisted laser des-             choalveolar lavage in patients with COVID-19
      orption/ionization time-of-flight mass spectro-             with invasive mechanical ventilation for acute
      metry in ventilated patients with pneumonia:                respiratory distress syndrome. Ann Am Thorac
      A pilot study. Respirology 2016;21:321-328.                 Soc 2021;18:723-726. https://doi.org/10.1513/
      https://doi.org/10.1111/resp.12677.                         AnnalsATS.202007-868RL.
60. Ullberg M, Lüthje P, Mölling P, Strålin K,                68. Kadmon G, Levy I, Mandelboim M, Nahum
      Özenci V. Broad-range detection of microor-                 E, Stein J, Dovrat S, et al. Polymerase-chain-
      ganisms directly from bronchoalveolar lavage                reaction-based diagnosis of viral pulmonary
      specimens by PCR/Electrospray Ionization-Mass               infections in immunocompromised children.
      Spectrometry. PLoS One 2017;12:e0170033.                    Acta Paediatr 2013;102:e263-268. https://doi.
      https://doi.org/10.1371/journal.pone.0170033.               org/10.1111/apa.12207.
61. Ragupathi        NKD,     Bakthavatchalam         YD,     69. Ogimi C, Waghmare AA, Kuypers JM, Xie H,
      Mathur P, Pragasam AK, Walia K, Ohri VC,                    Yeung CC, Leisenring WM, et al. Clinical signifi-
      et al. Plasmid profiles among some ESKAPE                   cance of human coronavirus in bronchoalveolar
      pathogens in a tertiary care centre in south                lavage samples from hematopoietic cell trans-
      India. Indian J Med Res 2019;149:222-231.                   plant recipients and patients with hematologic
      https://doi.org/10.4103/ijmr.IJMR_2098_17.                  malignancies. Clin Infect Dis 2017;64:1532-
62. Li Y, Sun B, Tang X, Liu YL, He HY, Li XY, et al.             1539. https://doi.org/10.1093/cid/cix160.
      Application of metagenomic next-generation              70. Bogoch, II, Andrews JR, Zachary KC, Hoh-
      sequencing for bronchoalveolar lavage diag-                 mann EL. Diagnosis of influenza from lower
      nostics in critically ill patients. Eur J Clin Micro-       respiratory tract sampling after negative upper
      biol Infect Dis 2020;39:369-374. https://doi.               respiratory tract sampling. Virulence 2013;4:82-
      org/10.1007/s10096-019-03734-5.                             84. https://doi.org/10.4161/viru.22466.

692                                                                          Volumen 25, Número 4, 2021
También puede leer