Guía de identificación y manejo integrado de plagas y enfermedades en piña
←
→
Transcripción del contenido de la página
Si su navegador no muestra la página correctamente, lea el contenido de la página a continuación
Guía Identificación y MIP
“Reduciendo el escurrimiento
de plaguicidas al mar Caribe”
Guía de identificación y
manejo integrado de plagas y
enfermedades en piña
Proyecto demostrativo “Evaluación del
sistema de producción de piña y la
implementación tecnológica de BPA en la
Región Nor-atlántica de Costa Rica”
I
Guía Identificación y MIP
Contraportada
Edición
Ing. Agr. Mérilyn Rodríguez Murillo
Asistente Coordinadora Proyecto REP-Car BANACOL
Colaboradores:
Departamento de Asistencia Técnica y Agricultura (DATA) BANACOL
Ing. Agr. Milton Vásquez Salazar
Ing. Agr. Eliécer Arce Ramírez
Ing. Agr. Rodolfo Rodríguez Rojas. M. Sc
Ing. Agri. Andrés Araya Alpizar.
Coordinación Regional Proyecto REP-Car
Dr. Alexander Cooman
PNUMA/UCR/CAR
Unidad de Coordinación Nacional
Dr. Elidier Vargas Castro (Coordinador MINAET)
M.Sc. Luis Matarrita Díaz (Coordinador MAG)
Dra. Pilar Alfaro Monge (REPCar)
Coordinador proyecto PNUMA-Banacol
Ing. Abel García Muñoz
Director del DATA BANACOL
Equipo Técnico de Proyectos Demostrativos
Ing. Agr. Abel García Muñoz
Ing. Agr. Mérilyn Rodríguez Murillo
Otros colaboradores
Ing. Agr. Pedro Vargas Sánchez
Ing. Agr. Julios Mbuga
Finca Agrícola Industrial San Cayetano
II
Guía Identificación y MIP
Índice
Contraportada...............................................................................................III
Índice ............................................................................................................III
Presentación ...................................................................................................V
Introducción ................................................................................................VII
1 Ciclo de vida del cultivo .......................................................................... 1
2 Muestreos................................................................................................ 3
2.1 Diseños de muestreos......................................................................................................... 4
2.2 Muestreos realizados ......................................................................................................... 5
3 Plagas...................................................................................................... 8
3.1 Cochinilla harinosa: (Dysmicoccus brevipes (Cochinilla rosada),
Dysmicoccus neobrevipes (Cochinilla gris)) ................................................................... 8
3.2 Sinfílidos (Hanseniella spp, Scutigerella spp, Symphylella spp) ............ 11
3.3 Caracol (Opeas pumilum, Cecilioides aperta)................................................... 13
3.4 Picudo (Metamasius dimidiatipennis) ..................................................................... 14
3.5 Nemátodos (Meloidogyne, Rotylenchulus, Helicotylenchus,
Pratylenchus y Criconemoides) .............................................................................................. 17
3.6 Thecla o Barrenador del fruto (Strymon basilide) ....................................... 20
3.7 Gusano soldado (Elaphria nucicolora) ................................................................. 22
4 Enfermedades ....................................................................................... 25
4.1 Pudrición del cogollo (Phytophthora parasitica), Pudrición del fruto
(Phytophthora cinnamomi)............................................................................
......................................................................................................................................................... 25
4.2 Fusarium (Fusarium sp)................................................................................................ 29
4.3 Hoja de tamal (Erwinia carotovora), Pudrición bacterial del fruto
(Erwinia chrysanthemi) ............................................................................................................... 32
4.4 Pudrición del tallo ............................................................................................................. 34
4.5 Pudrición acuosa o fruta bofa (Thelaviopsis paradoxa) ........................... 37
III
Guía Identificación y MIP
5 Problemas fisiológicos .......................................................................... 39
5.1 Quema por sol: .................................................................................................................... 39
5.2 Toxicidad:................................................................................................................................ 39
5.3 Estrés hídrico: ...................................................................................................................... 40
5.4 Deficiencias o exceso de nutrientes: ...................................................................... 40
6 Malezas ................................................................................................. 43
6.1 Descripción de la plaga: ................................................................................................ 43
6.2 Caminadora (Rottboellia cochinchinensis)......................................................... 43
6.3 Cizaña (Asystasia gangetica) ....................................................................................... 44
6.4 Mimosa (Mimosa pigra).................................................................................................. 44
6.5 Borreria (Spermacose alata)........................................................................................ 45
6.6 Tomatillo (Solanum torvum) ........................................................................................ 45
6.7 Bejuco (Mikania micrantha) ......................................................................................... 46
6.8 Paja Blanca (Saccharum spontaneum) .................................................................. 46
6.9 Golondrina (Commelina benghalensis)................................................................. 47
6.10 Zacate kikuyo (Pennisetum clandestinum) ......................................................... 47
6.11 Métodos de control:.......................................................................................................... 48
7 Combate de la Mosca del establo.......................................................... 50
7.1 Descripción de la plaga: ................................................................................................ 50
7.2 Ciclo de vida: ........................................................................................................................ 51
7.3 Habito y daño:...................................................................................................................... 51
7.4 Métodos de control:.......................................................................................................... 53
8 Bibliografía........................................................................................... 56
9 Glosario................................................................................................. 57
IV
Guía Identificación y MIP
Presentación
BANACOL de Costa Rica, es una empresa comprometida con la
producción de piña limpia, amigable con el ambiente y la salud de las
personas, de allí su interés en apoyar proyectos de investigación, que
promuevan la búsqueda de alternativas para el manejo del cultivo, sin
afectar los índices de producción, pero con un menor impacto sobre
nuestros recursos agua y suelo.
En procura de este compromiso, el Departamento de Asistencia
Técnica y Agricultura de BANACOL, división piña, estableció una
alianza con el Ministerio de Ambiente, Energía y Telecomunicaciones -
MINAET, el Ministerio de Agricultura y Ganadería – MAG, y el
Programa de las Naciones Unidas para el Medio Ambiente – PNUMA,
en el marco del proyecto “Reduciendo el Escurrimiento de Plaguicidas
al Mar Caribe”- REPCar, con el fin de tratar de disminuir el impacto
generado por los residuos de agroquímicos que día a día escurren
hacia nuestras costas.
El objetivo del proyecto REPCAR-BANACOL financiado por el Fondo
Mundial para el Medio Ambiente (GEF), se basó en la mejora del
sistema de producción de piña tradicionalmente utilizado por la
empresa, mediante la validación de nuevas prácticas sostenibles, que
redujeran el uso de plaguicidas, y fortalecieran la cultura ambiental en
zonas de alta producción de piña, en Costa Rica. El componente de
capacitación dentro del proyecto, permitió compartir los resultados
obtenidos y las lecciones aprendidas con el resto del gremio piñero.
La Guía “Identificación y manejo integrado de plagas y enfermedades
en piña” es una más de las herramientas que preparó BANACOL para
transmitir los conocimientos adquiridos durante la ejecución del
proyecto dentro del sector. El objetivo de este documento es
proporcionar a los productores piñeros un instrumento para la
V
Guía Identificación y MIP
identificación en el campo, de las principales plagas y enfermedades
que puedan afectar su cultivo y a la vez sugerir una estrategia de
manejo integrado, con lo que se asegure la protección de la salud
humana y el medio ambiente, sin que esto repercuta sobre la
economía del productor.
GABRIEL MONTOYA ARISTIZABAL
Gerente General BANACOL
ELIDIER VARGAS CASTRO
Coordinador REPCar/MINAET
NELSON ANDRADE COLMENARES
Coordinador PNUMA-UCR/CAR
ALEXANDRE COOMAN
Coordinador Regional REPCar
VI
Guía Identificación y MIP
Introducción
La palabra “plaga”, en la agricultura se refiere a todos los animales, plantas y
microorganismos que tienen un efecto negativo sobre la producción agrícola
(FAO, 1995). El Manejo Integrado de Plagas y Enfermedades (MIPE) es una
estrategia que involucra una serie técnicas (físicas, mecánicas, químicas,
biológicas, genéticas, legales y culturales) complementarias entre sí, que buscan
controlar de forma efectiva las plagas y enfermedades del cultivo de piña; de
modo que la utilización de plaguicidas se reduzca al mínimo necesario para
mantener la población de la plaga o la incidencia de la enfermedad, en niveles
inferiores a los que producirían daños o pérdidas inaceptables desde un punto
de vista económico.
Dentro de la filosofía del MIPE, los productores buscan nuevos métodos para el
control de las plagas y enfermedades, como es la aplicación de programas
preventivos de aplicación de agroquímicos, que reduzcan los efectos de estos
problemas sobre la cantidad y calidad del producto final. Sin embargo, existen
otros métodos de control relacionados con las características intrínsecas de las
plagas y enfermedades, y su relación con el cultivo y las condiciones
edafoclimáticas adversas. Con el manejo de los mismos, se puede continuar
reduciendo el uso de agroquímicos durante la producción.
En esta Guía de identificación de plagas y enfermedades se resume la
experiencia de BANACOL durante más de 20 años de producción de piña,
además de una revisión bibliográfica exhaustiva sobre el tema. En ella se
sugieren alternativas de control tendientes a minimizar el impacto ocasionado
por el cultivo intensivo de piña. Las imágenes que se pueden observar son el
resultado del trabajo de los muestreadores y técnicos en el manejo fitosanitario,
en las diferentes fincas de piña de BANACOL.
El objetivo de este documento desarrollado por BANACOL de Costa Rica, es
ofrecer una herramienta de consulta en campo, y toma de decisiones, para
pequeños, medianos y grandes productores, en el control de plagas y
enfermedades, con el fin de incentivar la reducción del uso de agroquímicos y
promover la producción de piña sostenible y amigable con el ambiente.
VII
Guía Identificación y MIP Ciclo de vida
1 Ciclo de vida del cultivo
El MIP se aplican en tres etapas: prevención, observación y control. La
prevención combina el conocimiento del cultivo, el ambiente y la plaga
para aplicar estrategias que limiten ataques iniciales de los agentes de
plagas, malezas y enfermedades.
La fenología es uno de los aspectos más importantes dentro del
manejo preventivo de plagas. Este concepto se refiere a los cambios
estacionales de los cultivos, determinados por los factores físicos del
ambiente y por mecanismos de regulación internos de las plantas.
La susceptibilidad del cultivo al daño causado por plagas, varía de
acuerdo con su estado de desarrollo. A su vez, la incidencia de las
plagas está en función de los factores ambientales y de la condición
del cultivo (CATIE 1990).
El conocimiento de las etapas fenológicas de un cultivo y su relación
con las plagas que lo atacan permite mejorar la perspectiva del
productor en la identificación de etapas claves para el control
preventivo de las plagas y, de esta forma, planear y establecer
métodos de control ajustados a cada situación.
En la figura 1 y 2 se presenta un esquema de las etapas fenológicas
del cultivo y la relación con la frecuencia de aparición de las
principales plagas. Las zonas más oscuras representan una mayor
probabilidad de presencia de la plaga o enfermedad dentro del cultivo.
1
Guía Identificación y MIP Ciclo de vida
Figura 1. Relación entre la fenología de la piña y las principales plagas que afectan el cultivo.
Figura 2. Relación entre la fenología de la piña y las principales enfermedades que afectan el cultivo.
2
Guía Identificación y MIP Muestreos
2 Muestreos
Un componente importante del MIP es la observación. Esta se realiza
por medio de muestreos, los cuales son una herramienta para
determinar características cuantificables de la población de una plaga
o enfermedad dentro del cultivo, con la finalidad de definir la
necesidad de alguna medida de control.
En todo proceso de muestreo, los elementos de la muestra deben
escogerse adecuadamente, de tal manera que los resultados que se
observen en ella, sean representativos del resto de la población a la
que pertenece la muestra. Para ello debe tenerse en cuenta que el
tamaño de la muestra sea el adecuado, dependiendo de la
homogeneidad de la población, y que el diseño de muestreo permita
que todos los miembros de la población tengan la misma probabilidad
de ser seleccionados como parte de la muestra.
Algunos de los parámetros utilizados al muestrear plagas son
“incidencia” y “severidad”. Incidencia es el número de plantas con
individuos de la plaga o visiblemente enfermas, sobre el total de
plantas evaluadas (porcentaje). La severidad es el número de
individuos de la plaga por planta evaluada y, para el caso de
enfermedades, es el porcentaje de la superficie de la planta afectada,
en relación a la superficie total. Estos datos le permiten al agricultor
definir niveles de daño, en los cuales es necesario realizar alguna
medida de control para detener el avance de la plaga.
El personal de campo que realiza los muestreos debe ser conciente de
la importancia de su trabajo en la toma de decisiones, para la
aplicación de medidas de control sobre plagas. Para un adecuado
monitoreo todo muestreador debe contar con un mapa o
representación gráfica del área o lotes a muestrear que les permita
ubicarse y distribuir los puntos de muestreo de acuerdo al diseño
establecido.
3Guía Identificación y MIP Muestreos
2.1 Diseños de muestreos
Al azar:
En este diseño todas
las plantas del cultivo
tienen igual
probabilidad de ser
seleccionadas, su
ventaja es la facilidad
de selección de los
sujetos de la
Figura 3. Diseño al azar del muestreo dentro de muestra. La
una sección de un lote. desventaja es que
necesita un mayor
tamaño de muestra para que sea representativo.
Sistemático:
Este muestreo se realiza caminando sobre una ruta establecida a
través del campo, tomando muestras a distancias especificas, puede
ahorrar tiempo y
servir para hacer
máximo uso de un
número fijo de
muestras. Se
selecciona una línea
de trayecto, cuya
distancia total se
divide por el número
de muestras a tomar.
Figura 4. Diseño sistemático del muestreo dentro de La forma del trayecto
una sección de un lote. es variable y puede ir
desde líneas
4Guía Identificación y MIP Muestreos
diagonales a través del campo, en zig-zag (Figura 4) o hasta diseños
que representan letras del alfabeto como en “X”.
2.2 Muestreos realizados
Los muestreos en las plantaciones de piña se realizan de forma
calendarizada, evaluando al mismo tiempo las plagas y las
enfermedades que afecten el cultivo. Dirigiendo el muestreo en la
etapa de desarrollo de plantas hacia la raíz y la planta, y en la etapa
de desarrollo de fruta, hacia la fruta.
Cuadro 1. Fechas de muestreo, tipo de muestreo y plagas a muestrear.
Edad Etapa Muestreo Dirigido
Muestreo Plagas de raíz y
45 DP Sinfílidos, caracoles,
enfermedades
picudos, nemátodos.
Muestreo Plagas de raíz y
90 DP Phytophthora parasitica,
enfermedades
Fusarium, Erwinia
Muestreo Plagas de raíz y
120 DP caratovora , PTD.
enfermedades
50 DF Muestreo de plagas en Fruta
60 DF Muestreo de plagas en Fruta
Muestreo de plagas en Fruta y Thecla, gusano soldado,
70 DF
enfermedades Phytophthora
80 DF Muestreo de plagas en Fruta solanacearum,
90 DF Muestreo de plagas en Fruta Thelaviopsis.
Muestreo de plagas en Fruta y
110 DF
enfermedades
*DP: desarrollo de plantación, DF: desarrollo de fruta.
Muestreo de plagas de raíz:
Este muestreo permite evaluar la calidad y cantidad de raíces que
presenta la plantación y determinar la presencia de plagas en el área
cercana a las raíces. El diseño de muestreo puede ser en forma en
zig-zag, que incluya toda el área de la sección a evaluar. Por cada
punto de muestreo se puede evaluar de 3 a 5 plantas, sin repetir la
cama de siembra en los diferentes puntos de muestreo.
5Guía Identificación y MIP Muestreos
Se extrae la planta completa y se realiza una determinación subjetiva
de la calidad del sistema radical por su largo y volumen. Además se
hacen observaciones entre las raíces y las hojas secas en la base del
tallo (Figura 5), con el fin de
identificar y cuantificar las
principales plagas de esta etapa, las
cuales son: Cochinilla harinosa,
Sinfílidos y Caracol.
El muestreo se puede realizar al
primer, tercer y quinto mes después
de la siembra; con un tamaño de
muestra entre 0,5 a 1% del total de
las plantas del área a muestrear.
Figura 5. Muestreo de plagas en
raíz. Muestreo de enfermedades:
El muestreo de enfermedades se
puede realizar al mismo tiempo que el muestreo de raíz, de forma
calendarizada, un ejemplo son las fechas propuestas en el Cuadro1.
Al inicio de cada sección se identifican las enfermedades presentes y
bajo este criterio se evalúa el resto de la plantación.
Es importante que dentro de la hoja de anotaciones exista una casilla
de plantas muertas, para reportar las plantas que por su condición de
avanzada descomposición de los tejidos no permite identificar
claramente la causa original.
Muestreo de plagas en fruta:
El diseño y el tamaño de este muestreo es muy similar al muestreo de
plagas en raíz. Se realiza con la intención prevenir daños en el fruto, y
evitar la presencia de individuos de la plaga en el momento del
empaque, lo cual podría ser motivo de rechazo.
Para determinar la presencia del gusano soldado (Elaphria nucicolora)
se realiza una búsqueda exhaustiva y conteo por planta, de las larvas
6Guía Identificación y MIP Muestreos
en la base del fruto, y entre las hojas ubicadas en la unión con el
pedúnculo.
Para el caso de la cochinilla el
muestreo se realiza de igual manera
que para el gusano soldado en la base
de la fruta. Además se debe realizar
un muestreo interno de la fruta para
determina la presencia de las
cochinillas en los “ojos” de la fruta
(Figura 6). El total de frutas a sacrificar
por sección puede ser de un 0,1%.
El objetivo es disminuir la posibilidad Figura 6. Muestreo interno de
de que la fruta llegue a empaque Cochinilla en la fruta de piña.
infestada con este insecto, el cual es
motivo de rechazo en los países de destino, y con cero tolerancia
(interna y externa) para el Servicio Fitosanitario del Estado.
En el muestreo de la thecla (Strymon basilides) se cuantifican no solo
las larvas que se observen, sino también los daños en fruta que se
observen.
Se puede realizar también un muestreo después de la aplicación
preventiva de algún insecticida, con el fin de determinar la eficiencia
de la aplicación, sobre la presencia de las principales plagas. Cuando
se da el fenómeno de la floración natural se debe realizar los
muestreos varias veces en la misma área, según sea el desarrollo de
las infrutescencias.
7Guía Identificación y MIP Muestreos
3 Plagas
3.1 Cochinilla harinosa: (Dysmicoccus brevipes (Cochinilla
rosada), Dysmicoccus neobrevipes (Cochinilla gris))
Taxomomía:
Homoptera:Pseudococcidae
Descripción de la plaga:
Es una de las plagas más importante
en el cultivo de piña. Son pequeños
insectos blancos del orden de los
Homópteros, que se localizan en las
axilas de las hojas inferiores de la
planta, las raíces y en el fruto Las
Figura 7. Hembras de D. hembras de este insecto son ápteras
neobrevipes en piña. ovales, de 2-6 mm de diámetro,
amarillentas o rosadas, cubiertas con
una capa de cera con prolongaciones
que se proyectan hacia los lados
NINFAS
(Figura 7). Los machos poseen dos alas
HUEVO
6 a 8 días
35 a 45 días y un par de filamentos posteriores; son
suaves y blancos. Los huevos son
blancos, puestos en grupos hasta de
300, bajo una capa algodonosa de cera
(Saunders et al , 1998).
ADULTO
90 días de vida
Ciclo de vida:
La cochinilla tiene un ciclo de vida
Figura 8. Ciclo de vida de incompleto y es ovovivíparo. Los huevos
la cochinilla.
para madurar y alcanzar su desarrollo
8Guía Identificación y MIP Muestreos
pueden durar entre 6 y 9 días. En su
ciclo de vida muda tres veces, en un
periodo que tarda aproximadamente
entre 34 a 45 días (Figura 8). El periodo
de vida es de aproximadamente 90
días, de los cuales 56 los pasa en el
periodo adulto (Gullan y Martín 2003).
Habito y daño:
Esta plaga ataca cualquier parte de la Figura 9. Síntomas en
planta durante todo el ciclo del cultivo. parches.
Las hembras maduras y ninfas chupan
savia de los tallos y raíces, secretando toxinas que provocan el retardo
del crecimiento y el desecamiento de la planta. Los síntomas de la
presencia de esta plaga se distribuyen en parches en la plantación
(Figura 9).
Las cochinillas son vectores del
Pineapple Mealybug Wilt-associated
virus (PMWaV), conocido como el virus
de Wilt, que provoca un desecamiento
del ápice hacia la base de la hoja y un
enrollamiento en el borde de las hojas
más afectadas.
La plaga puede ingresar por las flores
abiertas al interior de cada frutículo, lo
que representa un problema de rechazo Figura 10. Hembras de D.
en planta empacadora de difícil control brevipes en interior del fruto
(Figura 10), por este motivo el período
crítico de control se localiza entre la semana 7 y 10, después de la
inducción floral.
Las cochinillas presentan una relación simbiótica con hormigas del
género Solenopsis sp (hormiga de fuego), Pheidole sp (hormiga
9Guía Identificación y MIP Muestreos
cabezona) y Iridomyrmex sp (hormiga
argentina), donde las primeras son
cuidadas y transportadas a mejores
lugares de alimentación por las
hormigas, mientras las hormigas se
alimentan de las secreciones
azucaradas que producen las
cochinillas (Figura 11).
Figura 11. Hormigas Métodos de control:
transportando cochinillas en
piña. Procurar una adecuada preparación
de terreno para reducir la presencia
de colonias de hormigas.
Realizar monitoreo de las poblaciones de hormigas, en callejones y
alrededores de los lotes de siembra. Para el monitoreo se utiliza
pequeñas cantidades de cebo colocadas en vasos plásticos. Para el
control de la hormiga se realizan la aplicación de cebos como las
moléculas hidrometilnona y octaborato de sodio.
Realizar una adecuada selección de áreas para semilleros, en los
que no exista presencia de la plaga. La desinfección del material de
siembra por inmersión, se realiza usualmente con el insecticida
Diazinón.
Se ha probado la utilización de cepas del hongo entomopatógeno
Beauveria bassiana con buenos resultados para el control de
adultos de la cochinilla.
Mantener limpio de malezas los alrededores de la plantación para
prevenir la presencia de colonias de hormigas.
Monitoreo de la población de cochinillas en plantación y en frutas,
para definir aplicaciones no programadas.
10Guía Identificación y MIP Muestreos
Realizar aplicaciones preventivas de moléculas como endosulfan
(por ratificación en Convenio de Estocolmo Costa Rica debe buscar
opciones para sustituir su uso), etoprofos, diazinón, aceite agrícola
y sales potásicas (solamente los últimos 3 productos se pueden
utilizar en la etapa de desarrollo de fruta).
3.2 Sinfílidos (Hanseniella spp, Scutigerella spp,
Symphylella spp)
Taxonomía: Synphylla: Myriapoda
Descripción de la plaga:
Los sinfílidos son pequeños artrópodos
blancos, de cuerpo blando y antenas
largas (Figura 12), que se mueven muy
rápido en el suelo. Los adultos miden
entre 2 a 6 mm, y presentan 6 pares de
patas cuando eclosionan y 12 cuando Figura 12. Sinfílido adulto.
están desarrollados.
Habito y daño
Los sinfílidos son una plaga de suelo
distribuidos mundialmente. Se
alimentan de las secciones más jovenes
de las raíces, provocando el síntoma de
escoba de bruja (Figura 13), con lo que
se afecta la absorción de elementos
nutritivos, y por tanto se reduce el
crecimiento y los rendimientos del
cultivo. Pueden vivir por varios años y
resistir meses sin comer. Los suelos
Figura 13. Daño de raíz
húmedos, profundos, sueltos y con alto
(escoba de bruja).
contenido de materia orgánica
favorecen su reproducción. Los
11Guía Identificación y MIP Muestreos
primeros 3 meses de desarrollo de
plantación son críticos para el control
de esta plaga, su presencia se observa
en la plantación como parches
grandes y en caso avanzado los
síntomas son generalizados en todo el
cultivo (Figura 14).
Métodos de control:
Realizar una adecuada preparación
Figura 14. Síntomas de alta
de terreno, que permita controlar que
incidencia de sinfílidos en
plantación. la humedad del suelo no sea excesiva,
e incorporar los residuos de
plantación.
Construcción de drenajes eficientes dentro de las plantaciones para
el control de humedad.
Realizar muestreos de población en plantaciones jóvenes.
Eliminar plantas de piña en crecimiento en etapas de preparación
de terreno (plantas voluntarias).
Las aplicaciones programadas de nematicidas permite el control
cruzado de esta plaga.
12Guía Identificación y MIP Muestreos
3.3 Caracol (Opeas pumilum, Cecilioides aperta)
Taxonomía: Achatinoide: Subulinidae
Descripción de la plaga:
Los adultos de la especie O. pumilum
pueden medir entre 6 a 9 mm (Figura
15), mientras que los de la especie C.
aperta entre 4 a 6 mm. Los huevos
son blancos y de menos de 1mm. Los
caracoles son hermafroditas y
presentan autofecudación, cada
individuo puede producir Figura 15. Caracoles en planta
aproximadamente 35 huevos de piña.
mensuales.
Habito y daño:
Los caracoles se localizan en los primeros 10 centímetros de suelo,
cerca de las raíces donde se alimentan de los ápices principalmente.
Se alimenta también de raíces de
malezas como Rottboellia
cochinchinensis, Eleusine indica y
Emilia sp. Su daño provoca síntomas
de enanismo, des-uniformidad en la
plantación (parches) (Figura 16),
coloración rojiza y hojas angostas. Su
ciclo de vida es de 64 días. Los
ambientes húmedos con material en
descomposición favorecen su
reproducción. Las etapas iniciales Figura 16. Síntomas del daño del
(primeros 4 meses) son las más caracol: en plantación y en la
susceptibles a su daño. raíz.
13Guía Identificación y MIP Muestreos
Métodos de control:
Realizar muestreos de los niveles de las poblaciones y del daño,
para prevenir una incidencia mayor.
Un manejo adecuado de la humedad de los terrenos con
construcción de drenajes u otras prácticas.
Eliminación de hijos voluntarios que sirvan de alimento en etapas de
preparación de terreno.
Una adecuada preparación de terreno que permita la eliminación de
los residuos vegetales de la superficie del suelo.
Realizar una aplicación preventiva con etoprofos o carbofuran en
los primeros meses de desarrollo de plantación, para lotes con
historial de presencia de la plaga (productos de uso restringido en
Costa Rica, que solamente se puede adquirir bajo receta
profesional).
3.4 Picudo (Metamasius dimidiatipennis)
Taxomomía: Coléoptera: Curculionidae
Descripción de la plaga:
El adulto es de unos 2 cm de largo de
color negro en la parte trasera y
anaranjado de la mitad de su cuerpo
hacia delante, con dos puntos negros
a sus lados y un tercer punto en su
cabeza (Figura 17).
La larva es blanca con la cabeza
oscura y sin patas. En el estado pupal
o capullo, la larva se rodea de una
Figura 17. Adulto del M.
cápsula fibrosa hasta convertirse en
dimidiatipennis.
adulto de nuevo.
14Guía Identificación y MIP Muestreos
Ciclo de vida:
Es un insecto de metamorfosis completa, es decir, pasa por cuatro
estadios durante su ciclo de vida (Figura
18).
El ciclo del picudo se desarrolla por
completo dentro de la planta de piña, los Larva Pupa
30 a 35 días 10 a 12 días
huevos se localizan en las axilas de las
hojas y en los tallos, las larvas se
alimentan de tallos, coronas, hijos y
frutos, y el adulto succiona savia de las
hojas ocasionando excoriaciones.
Huevo Adulto
Habito y daño: 4 a 6 días 44 a 55 días
Es una plaga esporádica en el cultivo de
la piña, se produce en plantaciones
abandonadas, o cuando existe un mal Figura 18. Ciclo de vida del M.
manejo, donde se dejan en campo hijos dimidiatipennis.
de siembra o frutas. Al comenzar a
descomponerse atrae a los adultos por
el olor.
Su mayor efecto se observa en la
etapa de establecimiento de cultivo
donde las larvas penetran y hacen
galerías al tallo, causando pudriciones
y posteriormente la muerte de la planta
(Figura 19). Este síntoma es una
advertencia de la presencia de la plaga
dentro del cultivo. Las larvas incluso
Figura 19. Daño del picudo en
pueden atacar el fruto y la corona
tallo de la planta de piña.
tierna. El adulto raspa las hojas y
puede perforarlas.
15Guía Identificación y MIP Muestreos
Métodos de control:
El control de las larvas y las pupas es difícil debido a que se
encontran dentro de los tallos, por lo que las medidas de control se
concentra sobre los adultos.
La forma de diseminación de esta plaga es por medio de los hijos
en semilleros mal asistidos, por
eso es importante mantener los
semilleros limpios de esta plaga y
realizar una desinfección por
inmersión de todo el material de
siembra, con algún insecticida
registrado para piña.
Se debe procurar la adecuada
destrucción de los residuos de
cosecha y plantación, incorporando
los rastrojos en la etapa de
Figura 20. Control con preparación de terreno, evitando
feromonas del M. dimidiatipennis. tener piñales cercanos mal
asistidos que sean reservorio de la
plaga.
Es importante realizar muestreos
en horas tempranas de la mañana
para establecer niveles de
población. Se pueden utilizar de 2
a 3 trampas con feromonas de
agregación, para determinar el
Figura 21. Adulto de M. nivel de infestación en el cultivo
hemipterus afectado por B. (Figura 20). Se considera un nivel
bassiana. Fuente: Universidad Nacional de bajo en una trampa de 0-5 picudos,
Colombia
un nivel medio de 5-20 y un nivel
alto más de 20 adultos por trampa por semana.
16Guía Identificación y MIP Muestreos
En caso de presentarse alta infestación de la plaga se pueden
utilizar las trampas con feromona de forma masiva (de 5 a 7
trampas por ha) para el control de la plaga sin perjudicar el medio
ambiente.
En control biológico del picudo con la aplicación del hongo
entomopatógeno Beauveria bassiana da muy buenos resultados
(Figura 21). Es importante utilizar altos volúmenes de agua (hasta
800 galones por hectárea) para garantizar una adecuada mojadura
de la planta y utilizar un coadyudante que le dé adherencia y
protección solar a las esporas del hongo, como el pinolene o aceite
agrícola.
En caso de altas infestaciones difíciles de controlar se puede
realizar aplicaciones de insecticidas aprobados en piña como
carbaril, diazinón o Ethoprophos (este último producto es de uso
restringido en Costa Rica, que solamente se puede adquirir bajo
receta profesional), con volúmenes altos de agua (620 a 800
galones/ha), a las dosis recomendadas por la etiqueta del producto
o por un especialista del área.
3.5 Nemátodos (Meloidogyne, Rotylenchulus,
Helicotylenchus, Pratylenchus
y Criconemoides)
Taxonomía: Tylenchida: Tylenchoidea
Descripción de la plaga:
Los nematodos son gusanos
redondeados generalmente
microscópicos, bilateralmente simétricos
y cilíndricos en su sección transversal
(Figura 22). Un grupo de especies, entre Figura 22. Nematodo del
ellas Meloydogyne y Rotylenchulus género Helicotylenchus vistos
presenta un dimorfismo sexual marcado, a 400X.
17Guía Identificación y MIP Muestreos
donde la hembra adulta se modifica, y puede observarse en forma de
limón, pera, riñón entre otras; convirtiéndose en un parásito
sedentario. Los nematodos parásitos de plantas o fitonematodos
tienen una longitud entre 0.5 y 6.5. mm.
En la mayoría de los nematodos, la reproducción es sexual. Algunas
especies son partenogenéticas, capaces de producir huevos sin
fertilización. El ciclo de vida puede ser entre los 20 y 45 días
dependiendo de la especie. Las hembras ponen masas de huevos que
contiene hasta 2000 huevos.
Habito y daño:
De acuerdo al modo de alimentación, se clasifican en endoparásitos,
si penetran completamente en la raíz, se alimentan, maduran y
depositan sus huevos dentro de las raíces. En este grupo se incluyen
los nematodos de las agallas o de los nódulos de las raíces
(Meloidogyne spp.) y los nematodos de la lesión de las raíces
(Pratylenchus spp.). Si se alimentan penetrando solamente la parte
anterior de su cuerpo en la raíz son semiendoparásitos como es el
caso de Rotylenchulus reniformes y Helicotylenchus spp.
Son extremadamente activos en
condiciones favorables y sobreviven
bien en condiciones desfavorables.
Los síntomas que provocan una alta
incidencia de nemátodos en
plantaciones de piña son: disminución
del crecimiento, pérdida de turgencia
en bordes y puntas de hojas, flacidez
del pedúnculo y frutos pequeños. En
Figura 23. Agallas de las raíces afectadas se observan
Meloidogyne en raíz de piña. secciones necrosadas, deformaciones,
agallas y podredumbre (Figura 23).
18Guía Identificación y MIP Muestreos
Las partes de la raíz afectadas por los nematodos ofrecen puntos de
entrada de hongos tales como Fusarium spp, Verticillium spp y
Pythium spp.
Métodos de control:
Seleccionar un suelo libre de nemátodos, o al menos con muy bajas
poblaciones, realizar una adecuada preparación de terreno y
eliminación de material vegetal del ciclo anterior.
Realizar muestreos para determinar niveles de infestación de la
población, y tomar medidas correctivas cuando estas poblaciones
sean muy altas. Los umbrales económicos mencionados en la
literatura de las principales géneros que afectan el cultivo de piña
son: de 1-5 nematodos / 200 ml de suelo para Meloidogyne; para
Pratylenchus 1000 nemátodos /10 gr de raíz y para Rotylenchulus
de 300-310 nemátodos /250cm3 de suelo (Hernández, sf).
Eliminar plantas muy afectadas, que presentan marchites y
amarillamiento.
La utilización de enmiendas con materia orgánica tiene efectos
directos e indirectos sobre las poblaciones de nematodos, al
aumentar la actividad de
organismos antagónicos como
hongos, bacterias y otros.
En terrenos donde se presenten
altas poblaciones se puede realizar
entre 2 a 3 aplicaciones
preventivas de nematicidas, una
granular al suelo en el primer mes
después de siembra (Figura 24), y
una o dos más (dependiendo del Figura 24. Aplicación de
nivel infestación en ciclos nematicida granular.
anteriores) entre el segundo y
19Guía Identificación y MIP Muestreos
cuarto mes después de siembra. Se debe tomar en cuenta que los
productos utilizados estén debidamente autorizados a nivel nacional
e internacional para su uso en piña. Además es importante rotar
periódicamente los nematicidas utilizados, para reducir la
resistencia que la plaga puede adquirir al producto.
3.6 Thecla o Barrenador del fruto (Strymon basilide.)
Taxonomía: Lepidóptera:
Lycaneidae
Descripción de la plaga:
Es una pequeña mariposa de 2 cm
de envergadura (Figura 25). Se
reconoce esta familia por su
prolongación en las alas, colocadas
en el extremo posterior de éstas. El
Figura 25. S. basilides adulto en adulto es color gris azulado con
fruta de piña. puntos anaranjados con negro en los
extremos inferiores de las alas. El
huevo es elíptico de color claro y
mide menos de 1mm. La larva es
Huevo Larva rosada y robusta, la pupa es obtecta
4 y 5 días 8 a 12 días
(característica de los lepidopteros) y
de color café brillante.
Ciclo de vida:
El género Strymon; al igual que todos
los lepidopteros, presenta una
Adulto Pupa metamosfósis completa, la cual
20 a 27 días 8 a 10 días comprende las diferentes etapas
desde el huevo, la larva con 4 a 5
Figura 26. Ciclo de vida de S.
estadíos, la pupa y el adulto (Figura
basilides
26).
20Guía Identificación y MIP Muestreos
Habito y daño:
Estas mariposas son diurnas, se
encuentran cerca de áreas boscosas,
y donde existen malezas,
principalmente Heliconeas, de las
cuales chupan el néctar de las flores.
En las plantaciones de la piña el
adulto es atraído por las flores entre
la semana 7 a 12 después de forza
(inducción floral). Las hembras
colocan los huevos en las brácteas
de la fruta antes de que se abran las
flores. Las larvas de color rosado
penetran por la base carnosa de la
bráctea, llega a las bases florales, y
por último penetra al fruto causando
cavidades internas. Los frutos
afectados presentan una exudación
gomosa de color ámbar (Figura 27) la
cual se endurece al contacto con el
aíre. Al salir la larva deja un orificio Figura 27. Síntomas de daño de
la tecla en fruto de piña.
en el fruto, el cual puede servir de
entrada a hongos o bacterias.
El daño de las larvas de la thecla en la mayoría de las fincas, oscilan
entre un 5 y 10%, no obstante algunos lotes han alcanzado pérdidas
de hasta el 50% cuando el control no se realiza adecuadamente.
Métodos de control:
Monitoreo y trampeo de los adultos con bolsas de color rojo
impregnadas de sustancias adhesivas, principalmente alrededor de
zonas cercanas a bosques o tacotales.
21Guía Identificación y MIP Muestreos
Eliminar de los alrededores de las plantaciones plantas hospederas
de la thecla, como son las Heliconias.
Respetar franjas sin cultivo alrededor de las zonas con bosque o
tacotales de aproximadamente 15 metros.
Aplicación de insecticida al inicio de la floración, entre las semanas
9 y 11 después de la inducción floral, cada 10 días. Se puede
utilizar insecticidas químicos (como diazinón o carbaril) alternados
con insecticidas a base de Bacillus thuringiensis.
3.7 Gusano soldado (Elaphria nucicolora)
Taxonomía: Lepidóptera: Noctuidae
Descripción de la plaga:
El adulto posee unas alas anteriores color café claro y las posteriores
blancas, mide 1,5 cm.
El huevo de E. nucicolora es cilíndrico, de color blancuzco, con un
anillo color marrón en la parte superior. La larva presenta varios tonos
de café y negro, rayas y formas triangulares más oscuras, mide hasta
3 cm de largo.
Ciclo de vida:
Huevo Larva El huevo inicia la transformación a larva
5-7 días 12 a 17 días
después del cuarto día y puede emerger
entre los 5 y 7 días, pasando por tres
estadíos larvales, que duran entre 12 y
18 días para iniciar la etapa de pupa. En
los primeros estadíos la larva puede
confundirse con las de Spodoptera
Adulto Pupa
frugiperda, pero no se desarrolla tanto
24 a 32 días 12 a 15 días como ésta.
Figura 28. Ciclo de la E. La pupa mide aproximadamente 1 cm y
nucicolora. usualmente se pueden encontrarse en
22Guía Identificación y MIP Muestreos
hojas bajeras, brácteas y algunas
veces en el suelo. La pupa es de un
color café claro en sus inicios,
pasando por tres estadíos y
posteriormente cambia a color café
negruzco, luego se rodea de una
cobertura sedosa hasta llegar a la
etapa adulta. Todo el proceso dura
12 a 15 días hasta la salida del adulto
(Figura 29).
Figura 29. Adulto de E.
Habito y daño: nucicolora.
El adulto de esta especie es de hábitos nocturnos; las larvas son muy
activas en la noche, pero también atacan en el día. La hembra
deposita sus huevos principalmente en las hojas bajeras y en las
brácteas del fruto.
Las larvas prefieren ambientes muy húmedos y se pueden encontrar
en la base de la fruta, en el pedúnculo y los rebrotes, donde también
realizan el proceso de empupar. Es
común observar gran cantidad de
excremento en la base de la fruta
(pequeñas pelotitas negras).
Las poblaciones de esta plaga se
incrementan fácilmente, si no se
controlan de la forma adecuada, el
problema se puede presentar a partir
de la segunda semana después de
forza y hasta la cosecha. Figura 30. Daño externo e
Las larvas raspan y comen interno provocado por la larva
de E. nucicolora.
superficialmente la cáscara de la fruta,
23Guía Identificación y MIP Muestreos
alrededor de los ojos las lesiones producen una gelatina o goma que
puede ir de transparente a café oscuro. En la pulpa la lesión parece un
golpe y se presenta oxidación del tejido (Figura 30).
La mayoría poblacional de larvas se puede observar a los 95 días
después de forza.
Métodos de control:
Esta plaga se comporta muy similar a la thecla, se puede
encontrar cercana a bordes montañosos, por lo que no es
recomendable sembrar cerca de estas áreas.
Realizar muestreos semanales de larvas en la base de la fruta,
desde la semana 6 después de forza hasta 2 semanas antes de
cosecha, para evaluar la fluctuación de la población.
La utilización de la bacteria Bacilus thurigiensis ha dado muy
buenos resultados para el control de la larva de E. nucicolora. Se
puede intercalar conjuntamente con insecticidas químicos como el
diazinón y realizar aplicaciones en conjunto, durante el control de
thecla.
24Guía Identificación y MIP Enfermedades
4 Enfermedades
4.1 Pudrición del cogollo (Phytophthora parasitica),
Pudrición del fruto (Phytophthora cinnamomi)
Taxonomía: Oomycota: Pythiaceae
Descripción de la
enfermedad:
Históricamente ésta ha sido la 2
enfermedad más importante de
la piña, ampliamente
diseminada y comúnmente
1 4
presente en las plantaciones. 3
Phytophthora es un hongo
imperfecto, oomycete, saprofito,
que se reproduce mediante Figura 31. Estructuras reproductivas
clamidiosporas, esporangios del hongo Phytophthora: 1)
esporangios, 2) zoosporas, 3) oospora,
(zoosporas) y oosporas (Figura
4) clamidiospora.
31).
La P. parasitica es común que se presente en etapas de aceleración
del crecimiento de las plantas, entre los 45 y 60 días, y de los 5 a los 7
meses después de la siembra. Adicionalmente esta especie presenta
mayor incidencia en temporada lluviosa, preferiblemente en días
calurosos con precipitaciones.
Por su parte la especie P. cinnamomi presenta mayor incidencia
después de forza, principalmente en fruta después de la apertura de
las flores, también se da en plantaciones ya desarrolladas. La
presencia de esta enfermedad en la fruta requiere de condiciones de
alta humedad y baja luminosidad, en plantación puede presentarse
tanto en época seca como en la lluviosa.
25Guía Identificación y MIP Enfermedades
Síntomas:
Los síntomas se presentan generalmente
en parches, principalmente en bordes de
camino, bordes de cunetas y microollas,
es muy común en sitios donde se
maltrata más la plantación, por donde
pasa la maquinaria o el personal.
Síntomas de P. parasitica:
- Follaje: clorosis o amarillamiento
progresivo, hasta necrosis de las
puntas de las hojas apicales,
desprendimiento fácil de las hojas del
centro de la planta, halo necrótico de 1
a 2 pulgadas, superior al punto del
desprendimiento, corte de desgarre
marcado, olor fuerte a descomposición
del material vegetal necrótico (Figura
32).
- Fruta: poca ocurrencia de esta
enfermedad en fruta, necrosis basal
progresiva, fruta momificada que al
partirla presenta un halo necrótico
(Figura 32).
- Tallo: el corte longitudinal del tallo
presenta un halo en la periferia del
Figura 32. Síntomas de P. punto de emergencia de las hojas,
parasitica en: follaje, fruta y avance progresivo muy acelerado del
tallo. daño en este punto, llega a pudrir
antes que el follaje (Figura 32).
26Guía Identificación y MIP Enfermedades
- Raíz: comúnmente se desprende al intentar sacar la planta, raíz
necrótica no funcional.
Síntomas de P. cinnamomi:
- Follaje: clorosis de avance lento hacia
necrosis de las puntas de las hojas
apicales, desprendimiento no tan fácil
de las hojas del centro de la planta,
halo necrótico 1 a 2 pulgadas superior
al punto del desprendimiento pero más
irregular, corte de desgarre marcado,
olor a descomposición menos fuerte
que con P. parasitica (Figura 33).
- Fruta: presencia de tejido blando,
necrótico, momificado. Generalmente
los síntomas inician de forma basal,
pero puede presentarse el inicio
apicalmente, en estos casos las hojas
de la corona se desprenden fácil, y
hay presencia de halo. Cuando existe
humedad alta se presenta un micelio
blanco que cubre la fruta, esto es un
signo característico para el diagnóstico
de la enfermedad (Figura 33).
- Tallo: el corte longitudinal presenta un
halo necrótico que circunscribe un
tejido blanco, duro y momificado, lo
cual es una característica para su
Figura 33. Síntomas de P.
diagnostico (Figura 33).
cinnamomi en: follaje, fruta y
- Raíz: comúnmente se desprende al tallo.
intentar sacar la planta. La raíz se
presenta necrótica no funcional.
27Guía Identificación y MIP Enfermedades
Métodos de sobrevivencia y dispersión:
Este hongo puede sobrevivir en la materia orgánica, rastrojos, ñongas
e hijos voluntarios.
Sus esporas necesitan humedad para germinar y pueden
transportarse por agua, aire (polvo) y vectores.
Métodos de control:
El control de esta enfermedad
inicia con una adecuada
preparación de terreno, y
construcción de drenajes
eficientes que permitan la
eliminación del exceso de
humedad en los lotes de
producción.
Se debe seleccionar semilla
Figura 34. Desinfección limpia, que provenga de lotes que
mecánica de la semilla en el no hayan presentado incidencia de
campo. esta enfermedad. Además es
importante realizar una
desinfección del material de
siembra utilizando un fungicida
específico para oomicetes (Fosetil
al o metalaxyl) (Figura 34).
Es importante evitar provocar
lesiones en las hojas de las
plantas, ya que las heridas son el
punto de ingreso de la enfermedad
Figura 35. Control químico de a la planta. Una forma de lograr
Phytophthora en campo. esto, es prohibiendo el ingreso del
personal a lotes que presenten
28Guía Identificación y MIP Enfermedades
síntomas de esta enfermedad.
El uso de inductores de resistencia como el fosfito de potasio
reducen el efecto de la enfermedad sobre la planta
Existe restricción en el mercado de moléculas eficaces para el
control de hongos oomycetes, comúnmente se emplea de forma
preventivamente el fosetyl Al y curativa el metalaxyl (Figura 35).
4.2 Fusarium (Fusarium sp)
Taxonomía: Hypocreales: Nectriaceae.
Descripción de la enfermedad:
Fusarium es el hongo fitopatógeno de mayor dispersión mundial,
recientemente se identificó en el cultivo de la piña en Costa Rica,
aunque aún no se determina la especie especifica que ataca este
cultivo. Se presenta en muy alta incidencia en las plantaciones y a
nivel mundial existen especies muy agresivas para la piña, como es el
caso de F. guttiforme en Brasil, que provocó el cierre de plantaciones.
El Fusarium es un hongo ascomiceto, saprofito, capaz de ingresar a la
planta aún en ausencia de heridas. Este hongo se caracteriza por
producir tres tipos de esporas: las micronidias, macronidias y
clamidosporas, estas últimas tienen paredes muy gruesas, lo cual las
hace muy resistentes a condiciones ambientales desfavorables, y a la
ausencia de hospedantes.
La presencia de la enfermedad en campo se relaciona con
condiciones que ocasionan problemas en la raíz, ya sea por hipoxia o
anoxia o daño mecánico ocasionado al sistema radical.
Las condiciones climáticas necesarias para que se desarrolle esta
enfermedad son: temperatura entre 23 y 28ºC, mucha lluvia y alta
humedad relativa.
29Guía Identificación y MIP Enfermedades
Síntomas:
- Follaje: clorosis de hojas basales, también puede afectar hojas
apicales. Esta enfermedad es de avance lento, no en bandas
marcadas y la necrosis que presenta es lenta para apreciarse. No
hay desprendimiento foliar, ni olor
característico. Se presentan
síntomas de deshidratación foliar,
similar a déficit hídrico:
acucharamiento del follaje y
emisión de espinas. Si la
infección se da de forma
temprana pueden ocasionar la
muerte de la planta (Figura 36).
- Fruta: pobre desarrollo de la fruta,
Figura 36. Síntomas foliares de
tamaño pequeño, momificación, y
la presencia de Fusarium en
planta de piña. puede generar problemas internos
en la fruta cuando existe
interacción con otros patógenos.
- Tallo: lesión basal central que
genera decoloración,
amarillamiento a necrosis del
tejido; generalmente con forma
de avance oval que puede ser
asintomática a nivel de follaje.
Avance de la lesión llega a podrir
el tallo y ocasionar hasta la
Figura 37. Síntomas de muerte (Figura 37).
Fusarium en el tallo de la piña. - Raíz: las plantas afectadas
presentan escaso o nulo
desarrollo radical, raíces necrosadas no funcionales.
30Guía Identificación y MIP Enfermedades
Métodos de sobrevivencia y dispersión:
Este hongo presenta una muy amplia gama de hospedantes. Puede
sobrevivir en hijos, frutas, corona, materia orgánica o persistir en el
suelo por medio de las clamidosporas. Se considera que este hongo
una vez establecido en un lugar es imposible de erradicar
La forma de diseminación de la enfermedad es a través de partículas
de suelo, viento, lluvia, insectos, semillas y material vegetal.
Métodos de control:
Realizar una adecuada preparación de terreno que permita la
incorporación total de los rastrojos de plantación y reduzca la
presencia de exceso de humedad.
Seleccionar lotes para semillero libres de la enfermedad. Procurar
utilizar semilla limpia realizando aplicaciones en los lotes de semillero
con algún funguicida aprobado para
el cultivo.
La aplicación del hongo
biocontrolador Trichoderma, en la
etapa de preparación de terreno, o en
los primeros meses de desarrollo de
la plantación ha dado muy buenos
resultados para reducir la incidencia
de Fusarium en el cultivo. La dosis de
aplicación depende de la
concentración del producto utilizado, Figura 38. Desarrollo de cepas
de Trichoderma para el control de
se puede utilizar de 400 a 620 Fusarium.
galones de agua por hectárea
dependiendo de las condiciones climáticas imperantes.
Para el control químico se puede aplicar de forma preventiva las
moléculas carbendazina, prochloraz y propiconazole, a la dosis y
frecuencia que establezca un profesional del área agropecuaria.
31También puede leer
