PROTOCOLO PROCEDIMIENTOS RELACIONADOS CON EL PROCESO DE TOMA DE MUESTRA Y SU TRASLADO - Hospital de Curicó
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REPUBLICA DE CHILE
MINISTERIO DE SALUD PÚBLICA
SERVICIO DE SALUD MAULE
HOSPITAL SAN JUAN DE DIOS CURICO
PROTOCOLO PROCEDIMIENTOS
RELACIONADOS CON EL
PROCESO DE TOMA DE
MUESTRA Y SU TRASLADO
Número de edición : Cuarta
Fecha creación manual : Octubre de 2016
Protocolo: Requerimiento : APL 1.2
Procedimientos relacionados con el Edición : Cuarta
Fecha : Octubre 2016
proceso de Toma de Muestra y su
Página : 2 de 98
traslado
Vigencia : Octubre 2019
Índice
I. Tablas Resumen -5- -6-
Ii. Condiciones Generales - 17 -
Itm 01. Muestra De Sangre Venosa General - 18 -
Itm 02. Muestra De Sangre Venosa Sin Ligar - 21 -
Itm 03. Muestra De Gases Arteriales Y Venosos - 23 -
Itm 04. Muestra Gases Cordon - 26 -
Itm 05.A. Muestra Orina: Aislada, Segundo Chorro, Urocultivo - 27 -
Itm 05.B. Muestra Orina Sonda - 29 -
Itm 06. Prueba Tolerancia Glucosa Oral (Ptgo) - 30 -
Itm 07. Muestra Orina 24 Horas - 33 -
Itm 08. Muestra Eosinofilos Nasales - 34 -
Itm 09. Muestra Deposición: Leucocitos Fecales, Adenovirus, Rotavirus, Hemorragia Oculta - - 35 -
Itm 10. Tincion Gram - 36 -
Itm 11: Toma Muestra Tbc: Baciloscopia Expectoracion, Liquidos, Cultivo - 36 -
Itm 12. Cultivo Corriente Expectoracion - 40 -
Itm 13. Aspirado Endo Traqueal Cuantitativo - 41 -
Itm 14. Estudio Portacion Nasal Staphylococcus Aureus - 42 -
Itm 15. Cultivo Herida Operatoria - 43 -
Itm 16. Toma Muestra Cultivo Secrecion Faringea - 44 -
Itm 17. Instructivo Toma De Muestra Cultivo Vaginal: Flujo Vaginal, Cultivo Corriente, Endocervical
- 45 -
Itm 18. Cultivo Corriente Secrecion Uretral - 47 -
Itm 19. Cultivo Mycoplasma Ureaplasma - 48 -
Itm 20. Cultivo Corriente Absceso - 50 -
Itm 21. Cultivo Conjuntival Y Exudado Lacrimal - 51 -
Itm 22. Cultivo Raspado Corneal - 52 -
Itm 23. Endoftalmitis - 53 -
Itm 24. Tejido Y Hueso - 54 -
Itm 25. Lcr Y Otros Liquidos Esteriles - 54 -
Itm 26. Muestra Hemocultivo - 56 -
Itm 29. Micologico Superficial - 58 -
Itm 30. Micosis Profundas - 59 -
Itm 31. Coprocultivo - 60 -
Itm 32. Clostridium Difficile Toxigenico - 61 -
Itm 33.A. Vih Toma De Muestra - 64 -
Itm 33.B. Vih: Carga Viral, Genotipificacion Y Subpoblacion Linfocitaria - 68 -
Protocolo: Requerimiento : APL 1.2
Procedimientos relacionados con el Edición : Cuarta
Fecha : Octubre 2016
proceso de Toma de Muestra y su
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traslado
Vigencia : Octubre 2019
Itm 34. Hla – B 5701 - 70 -
Itm 35. Ifi: Virus Respiratorios - 72 -
Itm 36. Hepatitis B Y C - 75 -
Itm 37. Hanta - 75 -
Itm 38. Rpr - 77 -
Itm 39. Vdrl - 78 -
Itm 40. Vigilancia Erv - 83 -
Itm 41. Test Graham - 84 -
Itm42. Cropoparasitológico - 85 -
Iv. Derivados - 87 -
V. Instructivos Informacion A Pacientes - 91 -
Vi. Documentacion De Referencia - 98 -
Protocolo: Requerimiento : APL 1.2
Procedimientos relacionados con el Edición : Cuarta
Fecha : Octubre 2016
proceso de Toma de Muestra y su
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traslado
Vigencia : Octubre 2019
INTRODUCCIÓN
El presente Manual de Toma de Muestra busca entregar en forma clara y sencilla a funcionarios
administrativos y clínicos las directrices para una Toma de Muestra exitosa.
Se presentan 6 divisiones principales:
I. Tablas de Resumen: Presentan principales características de exámenes de manejo general,
agrupados según Unidad de proceso en Laboratorio.
II. Instrucciones Generales: Aplican a todas las muestras en relación a Identificación de Paciente,
Traslado de Muestras y Criterios de Rechazo Generales de Muestras.
III. Instructivos detallados para Toma de Muestras.
IV. Derivados: Prestaciones que no se procesan en Laboratorio.
V. Instructivos de Información al paciente.
VI. Referencias Bibliográficas que sustentan instrucciones de este manual.
La adherencia a estas directrices nos permitirá entregar desde la Unidad de Laboratorio resultados
precisos, confiables y oportunos.
I.
BIOQUIMICA SANGUINEA URGENCIA
Tpo Toma
Recipiente Vol Mínimo
PRESTACION Respuesta Muestra Orden INSTRUCCIÓN ADICIONAL
Pruebas Hepáticas (Incluye bilirrubina total y
conjugada, fosfatasas alcalinas totales, GGT, 2 Hrs 2 ml Se rechaza muestra con Hemolisis
transaminasas GOT/AST y GPT/ALT) Urgencia moderada.
TABLAS RESUMEN
Glucosa 2 Hrs 2 ml Urgencia Ayuno 8 - 10 Horas
Amilasa 2 Hrs 2 ml Urgencia
Bilirrubina total 2 Hrs 2 ml Urgencia
traslado
Se rechaza muestra con Hemolisis
Protocolo:
Bilirrubina total y conjugada 2 Hrs 2 ml
Urgencia leve.
Calcio 2 Hrs 2 ml Urgencia
Creatinina 2 Hrs 2 ml Urgencia
Se rechaza muestra con Hemolisis
Creatinkinasa – MB (CK-MB) 2 Hrs 2 ml
Urgencia leve.
Ejercico fisico extremo, aumenta
Tapa Amarilla.
Creatinkinasa total (CK-TOTAL) 2 Hrs 2 ml valores de CK. Se rechaza muestra
Un recipiente
ITM 01. Urgencia con Hemolisis moderada.
para una o más
Se rechaza muestra con Hemolisis
Dishidrogenasa láctica (LDH) 2 Hrs prestaciones. 2 ml
proceso de Toma de Muestra y su
Urgencia leve.
Procedimientos relacionados con el
Se rechaza muestra con Hemolisis
Electrolitos plasmáticos (sodio, potasio, cloro) 2 Hrs 2 ml
Urgencia moderada.
Fosfatasa alcalina 2 Hrs 2 ml Urgencia
Lipasa 2 Hrs 2 ml Urgencia
Nitrógeno ureico (BUN) y/o urea 2 Hrs 2 ml Urgencia
Fecha
Proteínas totales o albúmina. 2 Hrs 2 ml Urgencia Ayuno 8 - 10 Horas
Página
Edición
Vigencia
Proteina C reactiva 2 Hrs 2 ml Urgencia
Se rechaza muestra con Hemolisis
Transaminasaoxaloacética (TGO-AST). 2 Hrs 2 ml
Urgencia moderada.
Se rechaza muestra con Hemolisis
Transaminasa glutámicopirúvica (TGP-ALT) 2 Hrs 2 ml
Urgencia moderada.
Gammaglutamiltransferasa (GGT) 2 Hrs 2 ml Urgencia
: Cuarta
Requerimiento : APL 1.2
: 5 de 98
: Octubre 2016
: Octubre 2019
BIOQUIMICA SANGUINEA URGENCIA (Continuacion)
Tpo Toma
Recipiente Vol Mínimo
PRESTACION Respuesta Muestra Orden INSTRUCCIÓN ADICIONAL
Tener un reposo de 30 minutos
4 ml (marca
minimo, antes de tomar la muestra.
Ácido láctico (lactato) 2 Hrs Tapa Gris indicada en ITM 02.
Tomar sin ligar. Transporte inmediato
recipiente)
Urgencia al Laboratorio.
Jeringa
Gases y equilibrio ácido base en sangre (incluye: pH, Heparinizada 3
30 minutos ITM 03.
O2, CO2, exceso de base y bicarbonato) mL Pediatrico
1,6 mL (3
traslado
1 mL Urgencia / Muestra sin coagulos, sin
mL)
Protocolo:
Rutina burbujas.Transporte inmediato, con
0,6 mL (1
Jeringa unidad refrigerante.
Gases y equilibrio ácido base en sangre cordón mL)
Heparinizada 3
(incluye: pH, O2, CO2, exceso de base y 30 minutos ITM .
mL Pediatrico
bicarbonato) Urgencia /
1 mL
Rutina
Se debe avisar a Laboratorio
Urgencias antes de tomar y enviar
3 ml (marca
muestra, para controlar equipo.
Amonio 2 Hrs Lila (EDTA) indicada en ITM 02.
Enviar con unidad refrigerante.Se
recipiente)
proceso de Toma de Muestra y su
rechaza muestra con Hemolisis
Procedimientos relacionados con el
Urgencia intensa.
2,7 ml
Celeste (marca Recipiente único para prestación.Se
Dímero D 2 Hrs ITM 01.
(Citrato) indicada en rechaza muestra con Hemolisis
recipiente) Urgencia intensa.
Fecha
Página
Edición
BIOQUIMICA HORMONAS URGENCIA
Vigencia
Tpo Toma
Recipiente Vol Mínimo
PRESTACION Respuesta Muestra Orden INSTRUCCIÓN ADICIONAL
Tapa Amarilla.
Un recipiente
Gonadotrofina coriónica, fracción beta 2 Hrs 2 ml ITM 01.
para una o más
prestaciones.
: Cuarta
Urgencia
Requerimiento : APL 1.2
: 6 de 98
: Octubre 2016
: Octubre 2019
BIOQUIMICA INMUNOLOGICOS URGENCIA
Tpo Toma
Recipiente Vol Mínimo
PRESTACION Respuesta Muestra Orden INSTRUCCIÓN ADICIONAL
Tapa Amarilla.
Procalcitonina 2 Hrs 2 ml
Un recipiente Urgencia
ITM 01. Se rechaza muestra con Hemolisis
para una o más
Troponina T 2 Hrs 2 ml Urgencia moderada.
prestaciones.
ORINA URGENCIA
Tpo Toma
traslado
Recipiente Vol Mínimo
PRESTACION Respuesta Muestra Orden INSTRUCCIÓN ADICIONAL
Protocolo:
Sedimento de orina 2 Horas Tubo 10 mL 5 ml ITM 05. Urgencia
Amilasa 2 Horas 5 ml Urgencia
Tubo 10 mL 1 5 ml
Cuerpos cetónicos 2 Horas Urgencia
recipiente para
Embarazo, detección de 2 Horas 5 ml ITM 05. Urgencia
una o más
Glucosa en orina (cuantitativa) 2 Horas prestaciones. 5 ml Urgencia
Proteína cuantitativa en orina 2 Horas 5 ml Urgencia
2 Tubos 10
Indice Proteina/Creatinina 2 Horas 5 ml ITM 05.
mL Urgencia
proceso de Toma de Muestra y su
Procedimientos relacionados con el
HEMATOLOGIA URGENCIA
Tpo Toma
Recipiente Vol Mínimo
PRESTACION Respuesta Muestra Orden INSTRUCCIÓN ADICIONAL
Perfil Hematológico 2 Horas Urgencia
Fecha
Página
Hematocrito 2 Horas
Edición
Urgencia
Vigencia
Hemoglobina en sangre total 2 Horas 3 ml (marca
Urgencia
Lila (EDTA) indicada en ITM 01.
Recuento de leucocitos, absoluto 2 Horas recipiente) Urgencia
Recuento de plaquetas (absoluto) 2 Horas Urgencia
Tiempo de Protrombina 2 Horas Urgencia
: Cuarta
Requerimiento : APL 1.2
: 7 de 98
: Octubre 2016
: Octubre 2019
BIOQUIMICA SANGUINEA
Toma
PRESTACION Recipiente Vol Mínimo Transporte ORDEN INSTRUCCIÓN ADICIONAL
Tpo Respuesta Muestra
Pruebas hepáticas (incluye bilirrubina total y conjugada,
fosfatasas alcalinas totales, GGT, transaminasas 24 Hrs T Ambte.
Se rechaza muestra con
GOT/AST y GPT/ALT)
2 ml Rutina Hemolisis moderada.
Perfil lipídico (incluye: colesterol total, colesterol HDL,
24 Hrs T Ambte.
LDL, VLDL y triglicéridos) 2 ml Rutina Ayuno 8 - 10 Horas
Unidad
Glucosa 24 Hrs
2 ml refrigerante Rutina Ayuno 8 - 10 Horas
traslado
Colesterol total 24 Hrs 2 ml T Ambte. Rutina Ayuno 8 - 10 Horas
Protocolo:
Colesterol HDL 24 Hrs 2 ml T Ambte. Rutina Ayuno 8 - 10 Horas
Triglicéridos 24 Hrs 2 ml T Ambte. Rutina Ayuno 8 - 10 Horas
Ácido úrico 24 Hrs 2 ml T Ambte. Rutina
Amilasa 24 Hrs 2 ml ITM 01. T Ambte. Rutina
Bilirrubina total 24 Hrs 2 ml T Ambte. Rutina
Bilirrubina total y conjugada 24 Hrs T Ambte. Se rechaza muestra con
Tapa Amarilla.
2 ml Rutina Hemolisis leve.
Un recipiente
Calcio 24 Hrs 2 ml T Ambte. Rutina
para una o más
Creatinina 24 Hrs 2 ml T Ambte. Rutina
prestaciones.
proceso de Toma de Muestra y su
Creatinkinasa – MB (CK-MB) 24 Hrs T Ambte. Se rechaza muestra con
Procedimientos relacionados con el
2 ml Rutina Hemolisis leve.
No haber realizado ejercicio
Creatinkinasa total (CK-TOTAL) 24 Hrs T Ambte. estremo. Se rechaza
muestra con Hemolisis
2 ml Rutina moderada.
Fecha
Página
Edición
Vigencia
No ligar. Se rechaza
Dishidrogenasa láctica (LDH) 24 Hrs ITM 02. T Ambte. muestra con Hemolisis
2 ml Rutina leve.
Electrolitos plasmáticos (sodio, potasio, cloro) 24 Hrs T Ambte. Se rechaza muestra con
2 ml Rutina Hemolisis moderada.
Fosfatasa alcalina 24 Hrs 2 ml ITM 01. T Ambte. Rutina
: Cuarta
Requerimiento : APL 1.2
: 8 de 98
Fósforo (fosfato) 24 Hrs 2 ml T Ambte. Rutina
Gammaglutamiltransferasa (GGT) 24 Hrs 2 ml T Ambte. Rutina
: Octubre 2016
: Octubre 2019
BIOQUIMICA SANGUINEA (Continuacion)
Toma
PRESTACION Recipiente Vol Mínimo Transporte ORDEN INSTRUCCIÓN ADICIONAL
Tpo Respuesta Muestra
Lipasa 24 Hrs 2 ml T Ambte. Rutina
Nitrógeno ureico (BUN) y/o urea 24 Hrs 2 ml T Ambte. Rutina
Proteínas fraccionadas albúmina/globulina. 24 Hrs 2 ml T Ambte. Rutina Ayuno 8 - 10 Horas
Proteínas totales o albúmina. 24 Hrs 2 ml T Ambte. Rutina Ayuno 8 - 10 Horas
Proteina C reactiva 24 Hrs Tapa Amarilla. 2 ml T Ambte. Rutina
Un recipiente
ITM 01.
para una o más
Transaminasaoxaloacética (TGO-AST). 24 Hrs T Ambte. Se rechaza muestra con
prestaciones.
traslado
2 ml Rutina Hemolisis moderada.
Protocolo:
Transaminasa glutámicopirúvica (TGP-ALT) 24 Hrs T Ambte. Se rechaza muestra con
2 ml Rutina Hemolisis moderada.
Tapa Amarilla 2 ml/ Orina Se requiere envío conjunto
ITM 01.
Creatinina. Depuración de (clearence) 24 Hrs Muestra orina de 24 hrs T Ambte. de muestra orina. Entregar
(alicuota de ITM 07.
de 24 hrs. IP 04.
10 ml) Rutina
Tener un reposo de 30
Inmediato con minutos minimo, antes de
Ácido láctico (lactato) 24 Hrs Tapa Gris ITM 02. Unidad
proceso de Toma de Muestra y su
4 ml (marca tomar la muestra. No ligar.
Procedimientos relacionados con el
indicada en Refrigerante. Transporte inmediato al
recipiente) Rutina Laboratorio.
Inmediato con Dar aviso a Laboratorio
Amonio 24 Hrs Lila (EDTA) 3 ml (marca Unidad Urgencias antes de tomar y
indicada en enviar muestra, para
Fecha
Refrigerante.
Página
Edición
recipiente) Rutina controlar equipo.
Vigencia
2,7 ml Recipiente único para
Celeste (marca ITM 01. prestación.Se rechaza
Dímero D 24 Hrs T Ambte.
(Citrato) indicada en muestra con Hemolisis
recipiente) Rutina moderada.
3 ml (marca
Hemoglobina glicosilada 24 Hrs Lila (EDTA) indicada en T Ambte. Recipiente único para
: Cuarta
Requerimiento : APL 1.2
: 9 de 98
recipiente) Rutina prestación
: Octubre 2016
: Octubre 2019
BIOQUIMICA HORMONAS
Toma
Recipiente Vol Mínimo Transporte ORDEN
PRESTACION Tpo Respuesta Muestra INSTRUCCIÓN ADICIONAL
Gonadotrofina coriónica, fracción beta 24 Hrs 2 ml T Ambte. Rutina
Tiroestimulante, hormona (TSH) (adulto, niño o RN) 24 Hrs 2 ml T Ambte. Rutina Paciente en tratamiento con
T4 Libre (FT4) 24 Hrs Rutina levotiroxina debe Tomar la
2 ml T Ambte.
muestra previo a la
Tiroxina o tetrayodotironina (T4) 24 Hrs 2 ml T Ambte. Rutina administracion del
Triyodotironina (T3) 24 Hrs 2 ml T Ambte. Rutina medicamento.
Insulina 24 Hrs Tapa Amarilla. Unidad Rutina Se rechaza muestra con
2 ml
Un recipiente refrigerante Hemolisis leve.
ITM 01.
Hormona folículo estimulante (FSH) 72 horas para una o más Rutina
prestaciones. 2 ml T Ambte. Proceso Martes y Viernes.
hábiles
traslado
Indicar FUR
Protocolo:
Hormona luteinizante (LH) 72 horas 2 ml T Ambte. Rutina
hábiles
Prolactina (PRL) 72 horas Unidad Rutina Requiere reposo 30
hábiles 2 ml minutos previo a toma de
refrigerante
muestra
Curva Insulina 24 Hrs Rutina Entregar Instructivo IP 02.
Unidad
2 ml Se rechaza muestra con
refrigerante
Hemolisis leve.
Glucosa, prueba de tolerancia a la glucosa oral (PTGO) 24 Hrs Tapa Gris Entregar IP 02. Sólo
(Basal) / Tapa Indicado en Unidad paciente ambulatorio (Exc.
Amarilla (Post- tubo / 2 mL ITM 04. Rutina Hospitalización
refrigerante
carga) maternidad).
proceso de Toma de Muestra y su
Procedimientos relacionados con el
Entregar IP 02. Tomar 2
Unidad
Glucosa post-prandial 24 Hrs Tapa Amarilla 2 ml ITM 01. horas posterior a ingesta de
refrigerante
Rutina alimento
BIOQUIMICA INMUNOLOGICOS
Toma
Recipiente Vol Mínimo Transporte ORDEN
Fecha
PRESTACION Tpo Respuesta Muestra INSTRUCCIÓN ADICIONAL
Página
Edición
No haber sido sometido a
Vigencia
tacto rectal 3 días antes.
Antígeno prostático específico (PSA) 24 Hrs 2 ml T Ambte. Abstinencia sexual de 3
Rutina días.
Tapa Amarilla.
Procalcitonina 24 Hrs Un recipiente 2 ml T Ambte. Rutina
ITM 01.
Factor reumatoídeo 24 Hrs para una o más 2 ml T Ambte. Rutina
: Cuarta
72 horas prestaciones.
Requerimiento : APL 1.2
Alfafetoproteínas (AFP) 2 ml T Ambte.
: 10 de 98
hábiles Rutina
Proceso Martes y Viernes
72 horas
Inmunoglobulina E (IgE) 2 ml T Ambte.
: Octubre 2016
: Octubre 2019
hábiles RutinaORINAS
Tpo Toma
Recipiente Transporte Vol Mínimo ORDEN
PRESTACION Respuesta Muestra INSTRUCCIÓN ADICIONAL
Orina completa 24 Hrs Tubo 10 mL T Ambte. 5 ml ITM 05. Rutina
traslado
Sedimento de orina 24 Hrs Tubo 10 mL 5 ml ITM 05. Rutina Entregar IP 02.
T Ambte.
Protocolo:
Orina físico – químico (parámetros de orina) 24 Hrs Tubo 10 mL 5 ml ITM 05. Rutina
Amilasa 24 Hrs T Ambte. 5 ml ITM 05. Rutina
Ácido Úrico 24 Hrs T Ambte. 5 ml ITM 05. Rutina
Calcio cuantitativo en orina 24 Hrs T Ambte. 5 ml ITM 05. Rutina
Creatinina cuantitativa en orina 24 Hrs T Ambte. 5 ml ITM 05. Rutina
Cuerpos cetónicos 24 Hrs T Ambte. 5 ml ITM 05. Rutina
Tubo 10 mL
Electrolitos en orina (sodio, potasio, cloro) 24 Hrs T Ambte. 5 ml ITM 05. Rutina
1 recipiente Entregar IP 02.
Embarazo, detección de 24 Hrs T Ambte. 5 ml ITM 05. Rutina
para una o
Fósforo cuantitativo en orina 24 Hrs más T Ambte. 5 ml ITM 05. Rutina
proceso de Toma de Muestra y su
Glucosa en orina (cuantitativa) 24 Hrs prestaciones. T Ambte. 5 ml ITM 05. Rutina
Procedimientos relacionados con el
Urea en Orina 24 Hrs T Ambte. 5 ml ITM 05. Rutina
Microalbuminuria cuantitativa (Indice
24 Hrs T Ambte.
micral/creatinina) 6 ml ITM 05. Rutina
ITM 05.
Proteína cuantitativa en orina (24 Hrs) 24 Hrs T Ambte. Entregar IP 02. (IP 04.)
5 ml (ITM 07.) Rutina
Fecha
Página
Edición
2 Tubos 10
Vigencia
Indice Proteina/Creatinina 24 Hrs T Ambte. Entregar IP 02.
mL 5 ml ITM 05. Rutina
: Cuarta
Requerimiento : APL 1.2
: 11 de 98
: Octubre 2016
: Octubre 2019MICROBIOLOGIA
Tpo Toma
Recipiente Transporte Vol Mínimo ORDEN
PRESTACION Respuesta Muestra INSTRUCCIÓN ADICIONAL
Urgencia:
Expectoración: tubo esteril tapa
rosca Aspirado
Traqueal/Líquidos excepto LCR:
Tubo Cónico tapa rosca esteril
LCR: Tubo Khan esteril (plástico) Temperatura
Tinción de Gram 24 Hrs N.A ITM 10. Urgencia/Rutina Envío inmediato
Rutina: ambiente
Ocular: Portaobjeto con muestra
inoculada con torula seca esteril.
Vaginal: Torula con medio Stuart
traslado
Uretral: Portaobjeto inoculado con
torula seca esteril
Protocolo:
*Orina: 30 ml Entregar IP 02. Orina:Una muestra
Mantener recipiente
Orina: Frasco tapa rosca hermética *Otros líquidos: 1 1 Orden de diaria de la primera orina de la mañana,
Baciloscopia Zhiel-Neelsen por concentración 3 días sin exposición a luz.
esteril 60 ml ml ITM 11. Baciloscopia por segundo chorro, durante 6 dias (Inicio:
de líquidos (orina u otros) hábiles Transportar con
Líquidos: Tubo cónico esteril cada muestra Domingo) Liquidos: Muestra
unidad Refrigerante.
única.
Mantener recipiente
1 Orden de Entregar instructivo. 2 Muestras: Una al
2 días sin exposición a luz.
Baciloscopia Ziehl-Neelsen expectoración Caja Negra tapa rosca N.A ITM 11. Baciloscopia por consultar y otra a primera hora de la
hábiles Trasportar con
cada muestra mañana. Enviar protegida de la luz
unidad Refrigerante.
Expectoración: Tubo boca ancha Muestra expextoración debe obtenerse
Cultivo corriente expectoración -lavado tapa rosca esteril Lavado Temperatura mediante estimulación kinésica.
3 a 4 días ITM 12.
bronquio alveolar bronquio alveolar: Tubo cónico tapa ambiente Muestras contaminadas o no aptas se
proceso de Toma de Muestra y su
rosca esteril N.A Rutina rechazan.
Procedimientos relacionados con el
Temperatura
Cultivo corriente estudio portación nasal 3 a 4 días Tórula estéril Medio Stuart ITM 14.
ambiente N.A Rutina
Temperatura
Cultivo corriente herida infectada 3 a 4 días Tórula estéril Medio Stuart ITM 15. Muestra requiere aseo quirúrgico.
ambiente N.A Rutina
Temperatura
Cultivo corriente secreción faringea 3 a 4 días Tórula estéril Medio Stuart ITM 16.
ambiente N.A Rutina
Fecha
Temperatura
Página
Edición
Cultivo corriente secreción vaginal 3 a 4 días Tórula estéril Medio Stuart ITM 17.
Vigencia
ambiente N.A Rutina Entregar instructivo.
Envíar antes de 1
Tubo cónico tapa rosca con suero hora al laboratorio a
24 Hrs ITM 17.
fisiologico temperatura
Secreción Vaginal Directo al fresco ambiente Rutina
Temperatura
Cultivo corriente secreción uretral 3 a 4 días Tórula estéril Medio Stuart ITM 18.
ambiente N.A Rutina Retirar agar en laboratorio
Entregar instructivo. Solicitar material
Medio de transporte Temperatura
: Cuarta
Cultivo Mycoplasma /Ureaplasma 3 a 4 días ITM 19. en laboratorio. Envíar inmediatamente al
Requerimiento : APL 1.2
Mycoplasma/Ureaplasma ambiente
: 12 de 98
N.A Rutina laboratorio
: Octubre 2016
: Octubre 2019MICROBIOLOGIA (Continuacion)
Tpo Toma
Recipiente Transporte Vol Mínimo ORDEN
PRESTACION Respuesta Muestra INSTRUCCIÓN ADICIONAL
Temperatura
Cultivo corriente abscesos 3 a 4 días Tubo estéril ITM 20.
ambiente N.A Rutina
Exudado: Tórula Medio Stuart Temperatura ITM 21.
Cultivo corriente ocular 3 a 4 días
Raspado corneal: Agar ambiente N.A ITM 22. Rutina Retirar agar en laboratorio
Otica :Tórula Medio Stuart
Temperatura ITM 23.
Cultivo corriente otros: otica, tejidos, huesos 3 a 4 días Huesos, tejidos: Frasco boca ancha
ambiente ITM 24. Rutina
traslado
tapa rosca esteril
Cultivo corriente líquidos de cavidades Frasco hemocultivo pediátrico o
Protocolo:
3 a 4 días Inmediato. Tª ambte. ITM 25.
normalmente estériles Frasco esteril Rutina
Temperatura Dos frascos de sitio punción diferente.
Hemocultivo aerobio adultos Hasta 8 días Frasco hemocultivo adulto ITM 26.
ambiente 8 ml Urgencia Volumen optimo 10 mL
Temperatura
Hemocultivo aerobio niños Hasta 8 días Frasco hemocultivo pediátrico ITM 26. Dos frascos de sitio punción diferente.
ambiente
0,5 ml Urgencia Volumen optimo 4 mL
Urocultivo, recuento de colonias y Envío con unidad
3 a 4 días Frasco tapa rosca estéril hermético
antibiograma refrigerante. 10 ml ITM 05. Rutina / Urgencia Entregar IP 02.
2 días sin Entregar instructivo. Muestra se toma
Siembra inmediata en Agar Thayer Temperatura
Cultivo para Neisseria estudio ITM 16. en Poli ITS. Retiro agar en laboratorio.
Martin ambiente
sensibilidad Rutina Enviar Inmediatamente a laboratorio.
proceso de Toma de Muestra y su
Orina: Frasco tapa rosca hermética Mantener recipiente
Procedimientos relacionados con el
60 ml
Líquidos: Tubo cónico esteril sin exposición a luz. Orina: 30 ml Orden de
Cultivo para bacilo de Koch 30 ó 60 días ITM 10.
Tejido: Frasco tapa rosca esteril Trasportar con Liquidos: 1 ml Baciloscopia
Expectoración: Caja negra tapa
rosca unidad Refrigerante.
Fecha
Página
Muestra Unguel, dermica: Sobre
Edición
Vigencia
Hasta 30 papel filtro estéril Temperatura ITM 29.
Cultivo para hongos
días Muestra mucosas: Torula Medio ambiente ITM 30.
Stuart.
Rutina
Antibiograma corriente 3 a 4 días Asociado a muestra. NA Rutina
: Cuarta
Requerimiento : APL 1.2
: 13 de 98
: Octubre 2016
: Octubre 2019LIQUIDOS
TPO
PRESTACION RESPUESTA Recipiente Vol Mínimo Toma Muestra Orden INSTRUCCIÓN ADICIONAL
Liquidos cavidades
Otros líquidos:
traslado
Citológico Líquidos (Microscopía Directa, esteriles excepto
2 Horas 3 ml LCR: No ITM 25. Urgencia Retirar material en laboratorio
Protocolo:
recuento celular y citológico porcentual) LCR: Tubo tapa lila
aplica
LCR: Tubo de Khan
tubo Khan
esteril (plástico) Otros líquidos:
Físico – químico, de líquidos (Aspecto, color,
2 Horas Otros Líquidos: 3 ml LCR: No ITM 25. Urgencia Retirar material en laboratorio
pH, glucosa, proteína)
Tubo cónico estéril aplica
Cuerpos Lamelares (Líquido Amniótico) 2 Horas Tubo lila pediátrico ITM 25. Urgencia Retirar material en laboratorio
LCR: Tubo de Khan Retirar material en laboratorio.
esteril (plástico) Otros líquidos: Nota:Si el paciente se le solicita
LDH en líquido 2 Horas Otros Líquidos: 3 ml LCR: No ITM 25. Urgencia Citoquímico se utilizará este
Tubo cónico estéril aplica mismo tubo para realizar la
proceso de Toma de Muestra y su
tapa rosca determinación.
Procedimientos relacionados con el
Enviar con
2 Horas Jeringa heparinizada unidad ITM 25. Urgencia
pH en Líquido refrigerante
Diagnóstico Rápido Meningitis Bacteriana
2 Horas ITM 25. Urgencia Retirar material en laboratorio
(LCR) Tubo estéril 1-2 ml
Fecha
Página
Edición
Vigencia
Temperatura
Tinta China en LCR 2 Horas Tubo estéril ITM 25. Urgencia Retirar material en laboratorio
ambiente
: Cuarta
Requerimiento : APL 1.2
: 14 de 98
: Octubre 2016
: Octubre 2019VIRUS
TPO Toma
Recipiente Transporte
PRESTACION RESPUESTA Vol Mínimo Muestra Orden INSTRUCCIÓN ADICIONAL
Temperatura
Rotavirus 24 Hrs
ambiente 1 ml ITM 09. Urgencia
Frasco tapa rosca
Temperatura
Adenovirus 24 Hrs
ambiente 1 ml ITM 09. Urgencia
Registrar toma de muestra en SUR-
VIH. Embarazadas registrar semana
VIH 2 días hábiles Tubo Tapa roja de Gestación en orden. Si la muestra
no es enviada inmeditamente se
4 ml ITM 33.a. Orden VIH debe refrigerar
IF (virus sincicial respiratorio, parainfluenza 1,2 24 Hrs Orden de rutina. Retirar material en laboratorio.
traslado
y 3; influenza A y B, metapneumovirus y ADV) Si hay sospecha de
Tubo con PBS Unidad Refrigerante IRA grave enviar
Protocolo:
formulario de
ITM 35. notificación
Temperatura
Virus hepatitis C, anticuerpo de (anti HCV) 2 días hábiles
ambiente 8 ml ITM 36. Rutina
Tubo Tapa roja
Temperatura
Virus hepatitis B, antígeno de superficie 2 días hábiles
ambiente 8 ml ITM 36. Rutina
VIH test rápido (Accidentes laborales, Registrar toma de muestra en SUR-
Temperatura
embarazada en trabajo de parto sin control, 02 horas Tubo Lila VIH. Identificar si fuente o
ambiente
tamizaje diálisis urgencia, procuramiento). 4 ml ITM 33.a. Orden de VIH accidentado
Virus hepatitis C test rápido (Tamizaje diálisis Temperatura
02 horas Identificar si fuente o accidentado
urgencia, procuramiento) ambiente 8 ml ITM 36. Urgencia
Virus hepatitis B test rápido (Accidentes Tubo rojo
proceso de Toma de Muestra y su
Temperatura
laborales, tamizaje diálisis urgencia, trabajo 02 horas Identificar si fuente o accidentado
Procedimientos relacionados con el
ambiente
parto, procuramiento) 8ml ITM 36. Urgencia
Tubo lila: 3 ml Orden Urgencia
Temperatura
Detección IgM virus Hanta 02 horas Tubo lila y tubo tapa roja Tubo tapa roja: 5 anexar Formulario
ambiente
ml ITM 37 Anexo 1.
Examen derivado. Ayuna o
10 días Tubo lila y tubo lila con gel Temperatura desayuno liviano. Toma muestra poli
Carga Viral VIH
Fecha
hábiles separador ambiente Tubo lila: 3 ml Formulario Examen ITS. Recipiente se entrega en
Página
Edición
Vigencia
Tubo lila gel: 5 ml ITM 33.b. GES VIH laboratorio.
Adulto 2 Tubos lila: Examen derivado. Ayuna o
20 días Temperatura
Genotipificacion VIH Tubo Lila 3 ml Pediátrico Formulario Examen desayuno liviano. Coordinar toma
hábiles ambiente
Tubo lila: 3 ml ITM 33.b. GES VIH con laboratorio para envio
Adulto 2 Tubos lila: Examen derivado. Ayuna o
Temperatura
Subpoblación Linfocitaria 3 días hábiles Tubo Lila 3 ml Pediátrico Formulario Examen desayuno liviano. Coordinar toma
ambiente
Tubo lila: 3 ml ITM 33.b. GES VIH con laboratorio para envio
Examen derivado. Ayuna o
Temperatura
HLA B5701 4 días hábiles Tubo Lila Solicitud HLA desayuno liviano. Coordinar toma
: Cuarta
ambiente
Requerimiento : APL 1.2
3 mL ITM 34. B5701 (ITM 34.) con laboratorio para envio
: 15 de 98
: Octubre 2016
: Octubre 2019SEROLOGIA
Tpo Toma
Recipiente Transporte Vol Mínimo ORDEN
PRESTACION Respuesta Muestra INSTRUCCIÓN ADICIONAL
24 Hrs (2 Temperatura
R.P.R. Tubo Tapa Amarilla ITM 38.
horas) ambiente 5 ml Orden RPR Enviar inmediatamente al laboratorio
Tíficas, reacciones de aglutinación (Eberth H y Temperatura
24 Hrs Tubo Tapa Amarilla ITM 39.
O, Paratyphi A y B) (Widal) ambiente 4 ml
3 días Temperatura Adulto: 5 ml Si la muestra no se envía
V.D.R.L. Tubo Tapa Amarilla ITM 01.
hábiles ambiente Pediatricos: 3ml Planilla VDRL inmediatamente se debe refrigerar
DEPOSICIONES
Tpo Toma
Recipiente Transporte Vol Mínimo ORDEN
PRESTACION Respuesta Muestra INSTRUCCIÓN ADICIONAL
Temperatura
Coprocultivo 4 días Tórula con medio Cary blair
ambiente ITM 31. Rutina
Temperatura
Detección Clostridium Difficile toxigénico 02 horas Frasco tapa rosca hermética Mínimo 10 mL, ITM 32.
ambiente
deposición diarreica. Urgencia. Enviar formularios B2.
Temperatura
Frasco tapa rosca ITM 09.
traslado
Hemorragia Oculta en Deposiciones 24 Hrs ambiente Tamaño de una uva Urgencia. Mujer no debe estar en periodo mestrual
Temperatura
Protocolo:
Cultivo para vibrio 4 días Tórula medio Cary blair
ambiente ITM 31. Rutina
IAAS - VIGILANCIA
Tpo Toma
Recipiente Transporte Vol Mínimo ORDEN
PRESTACION Respuesta Muestra INSTRUCCIÓN ADICIONAL
Temperatura Se solicita para apoyo diagnóstico
Cultivo cuantitativo Aspirado Endotraqueal 3 a 4 días Tubo aspirado traqueal graduado ITM 13.
ambiente 0,5-1 mL. Rutina NAVM
Temperatura Se solicita para apoyo diagnóstico
Cultivo corriente herida operatoria infectada 3 a 4 días Tórula estéril Medio Stuart ITM 15.
ambiente Rutina IHO
Cultivo corriente Endoftalmitis Post Cirugia Se solicita para apoyo diagnóstico
3 a 4 días Frasco hemocultivo pediátrico Inmediato. Tª ambte. ITM 23.
Catarata Rutina EIPC
Frasco hemocultivo Temperatura Adulta: 8 ml Periférico y catéter (arrastre).
Tiempo diferencial Hemocultivo aerobio Hasta 8 días ITM 26.
adulto/pediátrico ambiente Pediatricos: 0,5 ml Urgencia Diagnóstico I. Asociada a Catéter
Temperatura Se debe enviar primer Lunes hábil de
Tórula con Medio Stuar ITM 40.
proceso de Toma de Muestra y su
Hisopado Rectal ERV 72 Horas ambiente Rutina cada mes.
Procedimientos relacionados con el
PARASITOS
TPO Toma
PRESTACION RESPUESTA Recipiente Transporte Vol Mínimo Muestra Orden INSTRUCCIÓN ADICIONAL
Graham, examen de 24 Hrs 5 portaobjetos con cinta adhesiva T. ambte ITM 41. Rutina Retirar instructivo
Depositar cada Retirar instructivo y el paciente no debe
día la cantidad de haber ingerido en los últimos dos días
Fecha
Página
Coproparasitológico seriado simple 24 Hrs Frasco tapa rosca con PAF T. ambte deposición que ITM 42. Rutina antibióticos, quimioterapéuticos,
Edición
Vigencia
corresponde a un purgantes oleosos, antiparasitarios, carbón
"poroto". ni bario.
Frasco limpio con suero T. ambte Utilizar suero fisiológico (agua en su
Gusanos macroscópicos, diagnóstico de 24 Hrs
ITM 42. Rutina defecto) y transporte inmediato.
: Cuarta
Requerimiento : APL 1.2
: 16 de 98
: Octubre 2016
: Octubre 2019Protocolo: Requerimiento : APL 1.2
Procedimientos relacionados con el Edición : Cuarta
Fecha : Octubre 2016
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Vigencia : Octubre 2019
II. CONDICIONES GENERALES
1. IDENTIFICACION DE PACIENTE
1.1. Solicitud de examen debe realizarse con letra clara y legible y debe incluir:
- RUN/RUT - Sexo
- Apellidos y nombre - Fecha de Nacimiento
- Origen (Sala, consultorio) - Profesional Responsable
1.2. Rotulación de recipiente con nombre de paciente se realiza mediante:
- Código de barra
- Rotulación Manual: En sitio asignado en recipiente o, en caso de no poseer, sobre papel
permacell.
2. CONSERVACIÓN Y TRASLADO DE MUESTRAS:
2.1. Cada servicio debe disponer de gradillas y cooler adecuado en tamaño de acuerdo a su
necesidad, identificado con logo de peligro biológico y con pilas refrigerantes en su interior
(suficientes para mantener una temperatura aproximada de 12°C) que permitirá el transporte
de muestras desde Unidades a Laboratorio.
2.2. A excepción de muestras que indican transporte inmediato en frío, muestras se almacenan
acorde a tipo de recipiente:
2.2.1. Las muestras cuyo recipiente corresponden a tubos (sangre, orina, tórulas con medio de
transporte) son almacenadas en gradillas ordenadas por paciente en filas.
2.2.2. Los recipientes que corresponden a frascos se almacenan en posición vertical asegurando el
cierre completo de recipiente.
2.3. Las órdenes de solicitud de exámenes deben trasladarse separadas de muestras, fuera de
cooler.
2.4. El transporte hacia laboratorio debe ajustarse a horario establecido para la recepción de
muestras:
2.4.1. Muestras Rutina Servicios Clínicos: 8:00 – 10:00 AM
2.4.2. Consultorios: 9:30 - 10:30
2.4.3. Otros Hospitales: 08:00 – 11:00
2.4.4. Muestras Urgencia: 24 Horas
3. CRITERIOS DE RECHAZO GENERAL:
Muestras no Trazables:
o Orden o recipiente con Datos Incompletos o ilegibles
o Discordancia entre los datos de la solicitud y rótulo del tubo
Transporte inapropiado
Muestras derramadas.
Recipiente inadecuado
Presencia de interferente por los métodos analíticos tales como hemólisis, lipemia.
Muestras coaguladas
Volumen insuficiente de muestra para realizar la técnica.Protocolo: Requerimiento : APL 1.2
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ITM 01. MUESTRA DE SANGRE VENOSA GENERAL
1. OBJETIVO: Atención y manejo integral del paciente, estableciendo la adecuada forma de toma
de muestra sanguínea y obtención de muestra.
2. RESPONSABLE: Técnicos Paramédicos, profesionales Enfermeros (as) Universitarias,
Matronas, Tecnólogos Médicos, Médicos
3. MATERIALES:
Toma Muestra Vacío: Aguja / mariposa y funda.
Tradicional: Jeringa desechables, aguja, mariposa.
Liga
Tórulas de algodón.
Alcohol 70%.
Tubos para muestras acorde a instructivo.
Códigos de barra y/o rotulador.
Recipiente para eliminar material cortopunzante.
EPP:
Guantes de procedimiento.
Pechera
Para la toma de muestra sanguínea en el Laboratorio se utilizan distintos tipos de tubos, de acuerdo a
los requisitos técnicos de los exámenes a realizar, estos tubos son:
Tubo extracción vacío tapa roja: posee acelerador de coagulación.
Tubo extracción vacío tapa amarilla: posee suero gel separador suero
Tubo extracción vacío tapa gris: posee Anticoagulante EDTA/Fluoruro
Tubo extracción vacío tapa lila: contiene anticoagulante EDTA.
Micro tubo tapa lila: contiene anticoagulante EDTA.
Tubo extracción vacío tapa celeste: contiene anticoagulante citrato de sodio 3,2%.
Tubo para lactato pediátrico se prepara en laboratorio con anticoagulante fluoruro de sodio.
4. DESARROLLO:
4.1. Requisitos del paciente: Acorde a instrucciones para cada analito (Ver tabla resumen).
4.2. Recepción e información paciente:
4.2.1. Recibir y saludar al paciente tanto en recepción del laboratorio como en la sala de toma de
muestra.
4.2.2. Como la venopunción para el funcionario que tome la muestra es un procedimiento
rutinario y sencillo, para el paciente es un evento nuevo y atemorizante, por tanto se debe
esforzar en dar al paciente la confianza necesaria para que disminuya la tensión y el miedo,
tomándose el tiempo necesario para explicar el procedimiento de recolección de muestra que
puede ser molesto y ocasionalmente producir dolor y responder a las inquietudes que puedan
surgir.Protocolo: Requerimiento : APL 1.2
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4.2.3. Verificar Identidad del Paciente:
Ambulatorio: solicitar que paciente o tutor indique su nombre y RUT.
Hospitalizado: verificar datos en brazalete de paciente
4.2.4. Verificar rigurosamente que nombres, apellidos y RUT del paciente coincidan con todos los
datos demográficos requeridos en la orden de solicitud de examen y de las distintas etiquetas de
código de barras.
4.2.5. Verificar que paciente se encuentra en las condiciones indicadas para él o los exámenes de
sangre que se va a realizar, como: Estar en ayunas, disponibilidad de tiempo en caso de
exámenes con múltiples tomas.
4.3. Rotulación de recipiente:
Pegar código de barra.
En unidades que no cuenten con el sistema de códigos de barra, deben rotular los tubos de
muestra, registrando los nombres, apellidos del paciente y servicio de procedencia con letra
legible en sitio destinado para ello.
4.4. Firmar solicitud de examen indicando funcionario que realiza punción y dejar orden en área
limpia.
4.5. Lavar o desinfectar manos. (Higienización con alcohol gel máximo en 3 ocasiones, cuarta
ocasión se debe realizar lavado de manos clínico)
4.6. Preparación de Material:
4.6.1.1.Identificar recipientes a utilizar
4.6.1.2.En caso de muestra al vacío poner funda a aguja.
4.6.1.3.En toma tradicional poner aguja a jeringa.
4.6.1.4.Preparar tórulas con alcohol
4.7. Punción:
4.7.1. Poner guantes de procedimiento.
- Acomodar sitio de punción de paciente y seleccionar vena a puncionar (Anexo 1).
Pacientes con fístula: NO puncionar fístula
4.7.2. En pacientes hospitalizados:
- No tomar muestra desde vía venosa periférica, realizar punción.
- Si se le están pasando medicamentos endovenosos o soluciones terapéuticas
endovenosas, las muestras sanguíneas para exámenes de laboratorio deben ser tomadas
del otro brazo. Si los dos brazos tuvieran vías de medicamentos, la muestra debe ser
tomada de un lugar más distal.
4.7.3. Desinfectar la zona de proximal a distal. Debe tener presente que una vez realizada la
descontaminación, no debe volver a tocar el área venosa.
4.7.4. Ligar a 4 traveses de dedos del lugar a puncionar.
4.7.5. Solicitar a paciente que cierre en forma suave el puño.
4.7.6. Traccionar la piel para fijar la vena.
4.7.7. Puncionar vena en ángulo de 30º (trate de no puncionar directamente sobre la vena,
puesto que la puede atravesar e impedir toma de muestra).Protocolo: Requerimiento : APL 1.2
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4.7.8. Conecte tubo o aspire suavemente, apenas se produzca flujo de sangre suelte torniquete.
4.7.9. Para toma de muestra al vacío rellenar tubo hasta cese de flujo y reemplazar caso de requerir
recipientes adicionales.
4.7.10. El orden de llene de recipientes siempre debe ser:
1º. Celeste
2º. Rojo/Amarillo
3º. Verde
4º. Lila
5º. Gris
6º. Tubos de preparación local
4.7.11. Remueva la aguja del brazo con movimiento suave al terminar de colectar.
4.7.12. Colocar tórula seca sobre la punción y comprima. En caso de ser posible, Solicite al paciente
que afirme la tórula sin flectar el brazo.
4.7.13. Desmonte la aguja:
4.7.13.1. Muestra al vacío: De la funda en receptáculo de material corto punzante
4.7.13.2. Muestra Tradicional: Con pinza y elimine en receptáculo de material corto punzante.
4.7.14. Coloque parche adhesivo y despida al paciente.
4.7.15. Retire material, desechos y retírese los guantes, desinfecte tanto la unidad como ligadura con
alcohol al 70%
5. CRITERIOS DE RECHAZO: General.
6. ANEXOS:
1. SITIOS DE PUNCION BRAQUIALProtocolo: Requerimiento : APL 1.2
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ITM 02. MUESTRA DE SANGRE VENOSA SIN LIGAR
1. OBJETIVO: Atención y manejo integral del paciente, estableciendo la adecuada forma de
toma de muestra sanguínea y obtención de muestra.
2. RESPONSABLE: Técnicos Paramédicos, profesionales Enfermeros (as) Universitarias,
Matronas, Tecnólogos Médicos, Médicos.
3. MATERIALES:
Toma Muestra Vacío: Aguja / mariposa y funda.
Tradicional: Jeringa desechables, aguja, mariposa.
Tórulas de algodón.
Alcohol 70%.
Tubos para muestras acorde a instructivo.
Códigos de barra y/o rotulador.
Recipiente para eliminar material cortopunzante
EPP:
Guantes de látex.
Pechera
Para la toma de muestra sanguínea en el Laboratorio se utilizan distintos tipos de tubos, de
acuerdo a los requisitos técnicos de los exámenes a realizar, estos tubos son:
Tubo extracción vacío tapa roja: posee acelerador de coagulación.
Tubo extracción vacío tapa amarilla: posee suero gel separador suero
Tubo extracción vacío tapa gris: posee Anticoagulante EDTA/Fluoruro
Tubo extracción vacío tapa lila: contiene anticoagulante EDTA.
Micro tubo tapa lila: contiene anticoagulante EDTA.
Tubo extracción vacío tapa celeste: contiene anticoagulante citrato de sodio 3,2%.
Tubo para lactato pediátrico se prepara en laboratorio con anticoagulante fluoruro de sodio.
4. DESARROLLO:
4.1 REQUISITOS DEL PACIENTE.
Acorde a instructivo por cada analito
4.1 Recepción e información paciente:
4.1.1 Recibir y saludar al paciente tanto en recepción del laboratorio como en la sala de toma de
muestra.
4.1.2 Como la venopunción para el funcionario que tome la muestra es un procedimiento
rutinario y sencillo, para el paciente es un evento nuevo y atemorizante, por tanto se debe
esforzar en dar al paciente la confianza necesaria para que disminuya la tensión y el miedo,
tomándose el tiempo necesario para explicar el procedimiento de recolección de muestra que
puede ser molesto y ocasionalmente producir dolor y responder a las inquietudes que puedan
surgir.
4.1.3 Verificar Identidad del Paciente:Protocolo: Requerimiento : APL 1.2
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Ambulatorio: solicitar que paciente o tutor indique su nombre y RUT.
Hospitalizado: verificar datos en brazalete de paciente
4.1.4 Verificar rigurosamente que nombres, apellidos y RUT del paciente coincidan con todos los
datos demográficos requeridos en la orden de solicitud de exámen y de las distintas etiquetas de
código de barras.
4.1.5 Verificar que paciente se encuentra en las condiciones indicadas para él o los exámenes de
sangre que se va a realizar, como: Estar en ayunas, disponibilidad de tiempo en caso de
exámenes con múltiples tomas.
4.1.6 Rotulación de recipiente:
Pegar código de barra.
En unidades que no cuenten con el sistema de códigos de barra, deben rotular los tubos de
muestra, registrando los nombres, apellidos del paciente y servicio de procedencia con letra
legible en sitio destinado para ello.
4.1.7 Firmar solicitud de examen indicando funcionario que realiza punción y dejar orden en área
limpia.
4.2 Lavar o desinfectar manos. (Higienización con alcohol gel máximo en 3 ocasiones, cuarta
ocasión se debe realizar lavado de manos clínico)
4.3 Preparación de Material:
4.3.1 Identificar recipientes a utilizar
4.3.2 En caso de muestra al vacío poner funda a aguja.
4.3.3 En toma tradicional poner aguja a jeringa.
4.3.4 Preparar tórulas con alcohol
4.4 Punción:
4.4.1 Poner guantes de procedimiento.
4.4.2 Acomodar sitio de punción de paciente y seleccionar vena a puncionar (Anexo 1):
Pacientes con fístula: NO puncionar fístula
4.4.3 En pacientes hospitalizados:
No tomar muestra desde vía venosa periférica, realizar punción.
Si se le están pasando medicamentos endovenosos o soluciones terapéuticas endovenosas, las
muestras sanguíneas para exámenes de laboratorio deben ser tomadas del otro brazo. Si los
dos brazos tuvieran vías de medicamentos, la muestra debe ser tomada de un lugar más distal.
4.4.4 Desinfectar la zona de proximal a distal. Debe tener presente que una vez realizada la
descontaminación, no debe volver a tocar el área venosa.
4.4.5 Solicitar a paciente que cierre en forma suave el puño.
4.4.6 Traccionar la piel para fijar la vena.
4.4.7 Puncionar vena en ángulo de 30º (trate de no puncionar directamente sobre la vena, puesto que la
puede atravesar e impedir toma de muestra).
4.4.8 Conecte tubo o aspire suavemente, apenas se produzca flujo de sangre suelte torniquete.
4.4.9 Para toma de muestra al vacío rellenar tubo hasta cese de flujo y reemplazar caso de requerir
recipientes adicionales.
4.4.10 El orden de llene de recipientes siempre debe ser:
7º. Celeste
8º. Rojo/AmarilloProtocolo: Requerimiento : APL 1.2
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9º. Verde
10º. Lila
11º. Gris
12º. Tubos de preparación local
4.4.11 Remueva la aguja del brazo con movimiento suave al terminar de colectar.
4.4.12 Colocar tórula seca sobre la punción y comprima. En caso de ser posible, Solicite al
paciente que afirme la tórula sin flectar el brazo.
4.4.13 Desmonte la aguja:
4.4.13.1 Muestra al vacío: De la funda en receptáculo de material corto punzante
4.4.13.2 Muestra Tradicional: Con pinza y elimine en receptáculo de material corto punzante.
4.4.14 Coloque parche adhesivo y despida al paciente.
4.4.15 Retire material, desechos y retírese los guantes, desinfecte tanto la unidad como ligadura
con alcohol al 70%
5 ANEXOS:
1. SITIOS DE PUNCION BRAQUIAL
ITM 03. MUESTRA DE GASES ARTERIALES Y VENOSOS
1. OBJETIVO: Establecer la adecuada toma de muestra de sangre arterial y gases venosos.
2. RESPONSABLE: Profesional Enfermero(a) universitario(a) y Matron(a).
3. MATERIALES:
Jeringa preheparinizada:
o Adulto: 3 ml
o Pediátrico: 1 ml.
Alcohol al 70%Protocolo: Requerimiento : APL 1.2
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Algodón.
Contenedor con pack hielo.
4. DESARROLLO:
La punción arterial es realizada por el profesional Enfermero(a) universitario(a) y Matron(a).
4.1. Condiciones del Paciente: Es imprescindible que el paciente repose unos 10 a 15 minutos antes
de la extracción de la muestra. Si tiene ventilación asistida, las constantes deben estar estables 20
minutos antes de la extracción. Se debe minimizar la ansiedad y el dolor, ya que afectan el patrón
respiratorio
4.2. Verificar Identidad del Paciente:
Ambulatorio: solicitar que paciente o tutor indique su nombre y RUT.
Hospitalizado: verificar datos en brazalete de pacienteVerificar rigurosamente que nombres,
apellidos y RUT del paciente coincidan con todos los datos demográficos requeridos en la orden
de solicitud de examen y de las distintas etiquetas de código de barras.
4.3.En pacientes con ventilación asistida verificar estabilidad de pulso y frecuencia respiratoria.
4.4.Preparación de Material
4.4.1. Rotulación de jeringa:
Pegar código de barra.
En unidades que no cuenten con el sistema de códigos de barra, deben rotular los tubos de
muestra, registrando los nombres, apellidos del paciente y servicio de procedencia con letra
legible en papel permacell.
4.4.2. Preparar tórulas con alcohol.
4.4.3. Firmar solicitud de examen indicando funcionario que realiza punción y dejar orden en
área limpia.
4.5. Lavar o desinfectar manos. (Higienización con alcohol gel máximo en 3 ocasiones, cuarta ocasión
se debe realizar lavado de manos clínico).
4.6. Poner guantes de procedimiento.
4.7. Desinfectar la zona de proximal a distal. Debe tener presente que una vez realizada la
descontaminación, no debe volver a tocar el área venosa.
4.8. Seleccione sitio a puncionar:
Vena
Arteria (Anexo 1). Si la muestra de sangre se va obtener de la arteria radial de la muñeca,
antes de realizar la extracción se debe evaluar la circulación sanguínea a la mano, mediante
la técnica de Allen.
4.9. Traccionar la piel para fijar vena/arteria.
Puncionar:
Vena en ángulo de 30º (trate de no puncionar directamente sobre la vena, puesto que la puede
atravesar e impedir toma de muestra).
Arteria en ángulo de 45°
4.10. Remueva la aguja del brazo con movimiento suave al terminar de colectar.
4.11. Colocar tórula seca sobre la punción y comprima.
4.12. En punción arterial, aplicar presión en el lugar de la punción, durante por lo menos 5 minutos
para detener completamente el sangrado. Si el paciente está recibiendo un tratamientoProtocolo: Requerimiento : APL 1.2
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anticoagulante o si tiene un tiempo de coagulación prolongado, debe mantenerse la presión por
más tiempo. Dos minutos después de comenzar a aplicar la presión, hay que inspeccionar de
nuevo el lugar, para cerciorase de que no se está desarrollando un hematoma. La colocación de
un apósito con presión no es recomendable. Si la hemorragia no cesa dentro de un tiempo
aceptable, hay que avisar al médico encargado del paciente.
Mientras se está aplicando la presión sobre el lugar de la punción, hay que comprobar si la
jeringa tiene burbujas de aire:
Si hay alguna burbuja presente, hay que desprenderla, tomando la jeringa con la punta de la
aguja hacia arriba y expulsando cuidadosamente con el embolo de la jeringa cualquier
cantidad de aire fuera de la misma.
4.13. Desmonte la aguja y ponga tapa de goma en forma inmediata.
4.14. Depositar muestra en frío para disminuir al máximo el metabolismo celular.
4.15. Coloque parche adhesivo y despida al paciente.
4.16. Retire material, desechos y retírese los guantes, desinfecte tanto la unidad como ligadura
con alcohol al 70%
5. TRANSPORTE:
La muestra debe enviarse a Recepción del Laboratorio antes de 15 minutos en frío.
5. CRITERIOS DE RECHAZO:
Generales
Muestra con burbuja, tiempo desde toma mayor a 1 hora.
6. ANEXOS:
Arteria radial en la muñeca: debe comprobarse primero mediante la técnica de Allen, la existencia
de una funcionalidad normal en la circulación de la arteria cubital.
Técnica Allen: En esta prueba el paciente cierra firmemente el puño, se aplica presión hasta que se
interrumpe la circulación en las dos arterias, la radial y la cubital (a). En esta condición el paciente
abre y cierra la mano rápidamente, hasta que la palma y los dedos están pálidos (b). Deja entonces
la mano abierta, el profesional deja de presionar sólo la arteria cubital y observa la mano que debe
irrigarse antes de 15 segundos, tiempo que la sangre de la arteria cubital demora en rellenar el
lecho capilar vacío (c). Si la arteria cubital no suministra sangre a toda la mano de forma adecuada,
es una “maniobra de Allen negativa”, no debe utilizarse la arteria radial como lugar de
punción. Si es positiva puede utilizarse esta localización.
Solicitar a paciente que cierre en forma suave el puño.Protocolo: Requerimiento : APL 1.2
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Arteria femoral en la ingle: no recomendada en niños recién nacidos por la posibilidad de lesionar
la cadera, vena y nervio femoral.
Arteria braquial en el brazo: es la más difícil de pinchar y además, el nervio mediano descansa
cerca de la arteria braquial, por lo que existe la posibilidad de dañarlo accidentalmente.
Arteria pedia dorsal: ubicada en la parte superior del pie, se puede realizar la extracción de sangre
de esta arteria en situaciones especiales, como lesiones en brazos, quemaduras, etc.
ITM 04. MUESTRA GASES CORDON
1. OBJETIVO: Establecer la adecuada toma de muestra de sangre de cordón.
2. RESPONSABLE: Profesional Enfermero(a) universitario(a) y Matron(a).
3. MATERIALES:
Jeringa preheparinizada:
o Adulto: 3 ml
o Pediátrico: 1 ml.
Alcohol al 70%
Algodón.
4. DESARROLLO:
Muestra debe ser tomada lo más pronto posible luego del nacimiento
4.1. Aislar segmento de cordón umbilical clampeando el cordón en dos extremos de tal manera que
quede aislado de la placenta (Anexo 1).
4.2. Lavar o desinfectar manos. (Higienización con alcohol gel máximo en 3 ocasiones, cuarta
ocasión se debe realizar lavado de manos clínico).
5. Poner guantes de procedimiento.
Puncionar cordón en forma paralela a vaso, para evitar perforarlo (Anexo 1).Protocolo: Requerimiento : APL 1.2
Procedimientos relacionados con el Edición : Cuarta
Fecha : Octubre 2016
proceso de Toma de Muestra y su
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traslado
Vigencia : Octubre 2019
6. TRANSPORTE:
La muestra debe enviarse a Recepción del Laboratorio antes de 15 minutos en frío.
7. CRITERIOS DE RECHAZO:
Generales
Muestra con burbuja, tiempo desde toma mayor a 1 hora.
8. ANEXO:
ITM 05.a. MUESTRA ORINA: AISLADA, SEGUNDO CHORRO, UROCULTIVO
1. OBJETIVO: Establecer la adecuada toma de muestra de orina aislada o urocultivo.
2. RESPONSABLE: Técnicos Paramédicos Profesionales Enfermeros (as) Universitarias, Matronas,
Tecnólogos Médicos.
2. MATERIALES:
Agua limpia tibia
Jabón
Rotulador
Recipiente capacidad 3 Lt.
Recolector urinario en lactante
3. CONDICIONES DEL PACIENTE:
Se deberá obtener la primera orina de la mañana (ya que se trata de una muestra más concentrada).
De no ser posible, el paciente debe abstenerse de orinar durante las tres horas previas al examen.
Para muestras de urocultivos:
- No forzar la ingestión de líquidos, ya que con ello se diluye la orina, alterando el recuento.
- Muestra de elección:
Ambulatorio Hospitalizado
Lactante Recolector Urinario Sondeo vesical
Adulto Orina segundo chorro Orina segundo chorro
Usuario Catéter
Recambio sonda CRS
Urinario a permanencia Recambio sonda
Urología
(CUP)Protocolo: Requerimiento : APL 1.2
Procedimientos relacionados con el Edición : Cuarta
Fecha : Octubre 2016
proceso de Toma de Muestra y su
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traslado
Vigencia : Octubre 2019
4. TOMA DE MUESTRA:
Pacientes adultos ambulatorios o pacientes hospitalizados conscientes y colaboradores se
entregan instrucciones para realizar aseo. Pacientes hospitalizados el proceso debe ser
supervisado por funcionario.
4.1. Realizar aseo genital prolijo:
En mujeres: separar cuidadosamente los labios mayores y realizar aseo desde adelante hacia
atrás. Enjuagar con abundante agua. Colocar tampón vaginal en caso de menstruación o flujo
vaginal.
En hombres: deslizar prepucio (piel que cubre el pene) hacia atrás y realizar aseo minucioso del
glande con agua y jabón. Enjuagar con abundante agua.
Lactante: Aseo perineal completo, debe incluir zona inguinal con posterior aseo genital según
sexo.
4.1.1. Paciente adulto:
Abrir cuidadosamente frasco sin tocar los bordes.
Mujer debe mantener labios separados al orinar.
Hombre debe mantener prepucio retraído al orinar
Eliminar el primer chorro en la taza del baño. Luego, continuar orinando (segundo chorro)
directamente en el frasco llenándolo hasta aproximadamente la mitad de su capacidad.
4.1.2. Lactante:
Abrir la bolsa.
Retirar el papel que recubre el adhesivo, teniendo el cuidado de no manipular la parte interna
del recolector.
Fijar la bolsa, pegando los bordes en los labios mayores en el caso de las niñas y en la zona de
alrededor del pene en caso de los niños.
Identificar hora. Al cabo de 30 minutos, si lactante no ha orinado debe repetirse el
procedimiento completo.
Vaciar cuidadosamente la orina desde el recolector a recipiente estéril
4.2. Cerrar frasco cuidadosamente, verifique que la muestra no se derramará.
4.3. Rotular recipiente y enviar.
4.4. Retirarse los guantes y realizar lavado clínico de manos.
4.5. Sondeo vesical:
4.5.1. Procedimiento realizado por personal enfermera(o) matron(a) con ayudante TENS acorde a
Técnica Sondeo Vesical. (ITM 05.b.)
5. CONSERVACIÓN Y TRASLADO DE MUESTRAS:
5.1. Una vez obtenidas las muestras deben ser transportadas inmediatamente al laboratorio en
contenedor secundario refrigerado.
6. TIEMPO DE ENTREGA DE RESULTADOS: 3 a 4 días.También puede leer
