"TOMA Y ENVIO DE MUESTRAS PARA EL DIAGNÓSTICO DE RABIA" - Centro Nacional de Servicios de Diagnóstico en Salud Animal (CENASA)

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"TOMA Y ENVIO DE MUESTRAS PARA EL DIAGNÓSTICO DE RABIA" - Centro Nacional de Servicios de Diagnóstico en Salud Animal (CENASA)
“TOMA Y ENVIO DE MUESTRAS PARA
     EL DIAGNÓSTICO DE RABIA”

Centro Nacional de Servicios de Diagnóstico en Salud Animal (CENASA)

        LABORATORIO DE REFERENCIA DE LA OIE PARA RABIA

                  MVZ EPA. ISRAEL NICOLÁS REYES

                                                          AGOSTO 18, 2021
                                                                            1
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Foto: Centro Nacional de Servicios de Diagnóstico en Salud Animal (CENASA).

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Contenido

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Importancia

 Foto: Centro Nacional de Servicios de Diagnóstico en Salud Animal (CENASA).

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Importancia

              Indicaciones y recomendaciones para evitar accidentes
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DEFINICIONES

•   Seguridad(ISO 45001)
•   Accidente de trabajo

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¿POR QUÉ PODRÍA SUCEDER UN ACCIDENTE?

a) Condiciones Inseguras:(4%)

b) Actos Inseguros: (96%)

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DEFINICIONES

Peligro: Fuente o situación potencial de daño , lesión o daño.
Riesgo: lesión o enfermedad

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BIOSEGURIDAD

Es un conjunto de normas y medidas para proteger la salud
del personal, frente a riesgos biológicos, químicos y físicos
a los que está expuesto en el desempeño de sus funciones,
también a los pacientes y al medio ambiente. (OMS 2005)

                                                                             Fuente: El desarrollo del símbolo de riesgo biológico.
                                                                https://seguridadbiologica.blogspot.com/2010/07/el-desarrollo-del-simbolo-de-
                                                                                                  riesgo.html

                                                                                                                                                9
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PRINCIPIOS DE LA BIOSEGURIDAD

 1. Universalidad
 2. Barreras de protección
 3. Medidas de eliminación

                                Fuente: "Medidas de Bioseguridad“. jueves, 8 de septiembre de 2016.
                                http://medidasdebioseguridadgraco.blogspot.com/2016/09/medidas-de-
                                                         bioseguridad.html.

                                                                                                      10
PRINCIPIOS DE LA BIOSEGURIDAD

    1.- UNIVERSALIDAD

Todo el personal debe seguir las precauciones
estándares
•    Capacitación
•    Instructivos

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PRINCIPIOS DE LA BIOSEGURIDAD

2.- USO DE BARRERAS PROTECTORAS

Establece el concepto de evitar
la exposición directa
minimizando los accidentes.

                                  Centro Nacional de Servicios de Diagnóstico en Salud Animal (CENASA).

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PRINCIPIOS DE LA BIOSEGURIDAD

Considerar:
que las muestras procesadas durante la rutina pueden contener
otros agentes patógenos que atacan el sistema nervioso
central.

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PRINCIPIOS DE LA BIOSEGURIDAD

INMUNIZACIÓN

   Esquema profiláctico pre-exposición
   3 semanas después de la última 0,5 UI/ml
   Monitoreo de titulación de anticuerpos rábicos

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PRINCIPIOS DE LA BIOSEGURIDAD

EQUIPO DE PROTECCIÓN PERSONAL

•   Overol
•   Guantes de hule grueso
•   Careta o mascarillas con protección
•   Cubre bocas- mascarilla
•   Cofia
•   Botas de campo
•   Faja
•   Mandil impermeable

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PRINCIPIOS DE LA BIOSEGURIDAD

CONSIDERAR

• Lavarse siempre las manos
• Cubrir cortadas
• Herida lavada con agua y jabón,
  Desinfección    del    material
  utilizado

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PRINCIPIOS DE LA BIOSEGURIDAD

3. MEDIDAS DE ELIMINACIÓN

Es el conjunto de dispositivos y
procedimientos a través de los cuales
se procesan y eliminan muestras
biológicas sin riesgo para los
operadores y la comunidad

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APERTURA DEL CRÁNEO Y TOMA DE MUESTRA

GRANDES Y MEDIANAS ESPECIES

Recolección de muestras de animales sospechosos de rabia o de
aquellos animales que muestren signos de alguna enfermedad
nerviosa.

El proceso de sacrificio no debe dañar el encéfalo (NOM-033-
SAG/ZOO-2014)

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APERTURA DEL CRÁNEO Y TOMA DE MUESTRA

Extracción y toma de muestra:

•   MVZ o personal entrenado
•   EPP
•   Se recomienda lavar antes de iniciar la necropsia con
    abundante agua y jabón
•   Separar la cabeza del cuerpo del animal a nivel de la articulación
    atlanto-occipital
•   Ubicarla sobre una mesa o soporte.
•   Sujetar firmemente la cabeza

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APERTURA DEL CRÁNEO

 INSTRUMENTOS Y MATERIAL

•Segueta o sierra de carnicero
•Cuchillo
•Tijeras para cirugía
•Pinzas

PARA EL ENVÍO DE LAS MUESTRAS PARA EL
DIAGNÓSTICO:

•Bolsas de plástico (de preferencia con cierre hermético, tipo ziploc)
•Frascos de plástico de boca ancha con cierre hermético de un volumen
de 1 y medio litros
•Refrigerantes en cantidad suficiente o Glicerina fosfatada al 50 por
ciento
•Hielera

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APERTURA DEL CRÁNEO

APÉNDICE “A” (NORMATIVO)

1. Retirar la piel del cráneo y efectuar los siguientes cortes con
segueta o sierra de carnicero para el corte de los huesos

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APERTURA DEL CRÁNEO

 2. El primer corte es el del hueso frontal, transversal y posterior a las cuencas oculares, las cuales
 sirven para sujetar la cabeza y como puntos de referencia.

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APERTURA DEL CRÁNEO

3. Se hacen dos cortes, uno en cada
hueso parietal, desde el agujero
occipital hasta el hueso frontal
haciendo un corte longitudinal

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APERTURA DEL CRÁNEO
 4. Desprender la bóveda craneana para exponer el encéfalo

         Foto: Centro Nacional de Servicios de Diagnóstico en Salud Animal (CENASA).

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                                                              del mesencéfalo (tallo cerebral) hasta los dos hemisferios.

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APERTURA DEL CRÁNEO

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APERTURA DEL CRÁNEO

PRENSA MECÁNICA

Garantizar la bioseguridad,
la salud y seguridad del
personal
Disminuye el riesgo de
accidentes y
enfermedades

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ENVÍO DE LA MUESTRA

Normativa nacional e internacional

            Normas Especiales Relativas a Mercancías Peligrosas establecidas por la Asociación Internacional del Transporte Aéreo (AITA).
            Estas indicaciones se resumen en el Capítulo 1.1.1. Recolección y envío de muestras para el diagnóstico (Sistema Básico de
            Triple Embalaje).
            NOM-051-SCT2/2003, ESPECIFICACIONES ESPECIALES Y ADICIONALES PARA LOS ENVASES Y EMBALAJES DE LAS
            SUBSTANCIAS PELIGROSAS DE LA DIVISIÓN 6.2 AGENTES INFECCIOSOS

                                                                                                                                            28
ENVÍO DE LA MUESTRA

                  Foto: Centro Nacional de Servicios de Diagnóstico en Salud Animal (CENASA).

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ENVÍO DE LA MUESTRA

      Diúrex                                                         Cráneo

                      Foto: Centro Nacional de Servicios de Diagnóstico en Salud Animal (CENASA).

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ENVÍO DE LA MUESTRA

                      Foto: Centro Nacional de Servicios de Diagnóstico en Salud Animal (CENASA).
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ENVÍO DE LA MUESTRA

                      Principios de la bioseguridad
                            Foto: Centro Nacional de Servicios de Diagnóstico en Salud Animal (CENASA).

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ENVÍO DE LA MUESTRA

                      33
ENVÍO DE LA MUESTRA

Envío menor de 24 hrs: refrigeración.

Mayor a 24 hrs: congelación.

Glicerol al 50% en PBS

Coordinar envíos.

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ACEPTACIÓN Y RECHAZO

Muestras para aceptación:

Bovino: encéfalo, médula espinal y cerebelo.
Perro: encéfalo, médula espinal y cerebelo (cabeza del animal).
Quirópteros: se debe enviar el espécimen completo congelado.
Roedores: se debe enviar el espécimen completo congelado

                                               Foto: Centro Nacional de Servicios de Diagnóstico en Salud Animal (CENASA).

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ENVÍO DE LA MUESTRA

Criterios de rechazo:

Muestras inadecuadas (diferentes a las establecidas).
Muestra insuficiente.
Muestras en estado de descomposición con avanzados cambios
autolíticos.
Muestras no identificadas.
Muestras en formaldehído, fenol o alcohol.

                                                             36
37
CENASA-LABORATORIO DE REFERENCIA DE OIE PARA RABIA
               Dirección: Rogelio Estrada Rodriguez
                  rogelio.estrada@senasica.gob.mx
                                                      38
39
“DIAGNÓSTICO DE RABIA”

Centro Nacional de Servicios de Diagnóstico en Salud Animal (CENASA)

             Laboratorio de Referencia de la OIE para rabia

                    MVZ EPA ISRAEL NICOLÁS REYES

                                                              Agosto, 2021
                                                                             40
Índice

   Introducción     Pruebas
                  diagnósticas   Conclusiones

                                                41
Introducción

        Laboratorio certificado en NMX 17025, ISO 9001, ISO 14001,ISO 45001 e ISO 17043

                                                       Fotos: Rogelio Barrios

                                                                                          42
Laboratorio de Referencia de OIE para la rabia

 Alemania, Canadá, China, Corea, USA, Francia, Reino Unido, Sudáfrica, Rumania, India,
 Israel y México.

Mayo de 2014

                                          https://www.oie.int/es/que-ofrecemos/red-de-expertos/laboratorios-de-referencia/
                                                                                                                       43
Laboratorio de Referencia

 Utilizar, promover y difundir los métodos de diagnóstico validados
 Utilizar, desarrollar Material de Referencia de acuerdo a las prescripciones de la OIE
 Distribuir a los laboratorios nacionales los productos biológicos
                                                                                           44
Laboratorio de Referencia

 Organizar ensayos “inter-
  laboratorios” con el fin de
  asegurar la equivalencia de
  los              resultados
  (ISO/IEC17043)

                                45
Ensayos de Aptitud (AP)
            Evaluar                   Estandarizar y armonizar            Emisión de resultados

Objetivo:

                Identificar diferencias           Identificar problemáticas y acciones
                                                                                                  46
Red de Laboratorios

SON
      CHIH

                                  Foto: CENASA

         DUR

               ZAC

                     QRO                                     YUC

                           CDMX
                                                         CAMP
                           CENASA                TAB

                                                   CHI

                                                           Foto: CENASA, BSL-2

                                                                                 47
Diagnóstico

              48
Pruebas de laboratorio para el diagnóstico de
rabia

Área de rabia del Centro Nacional de Servicios
de Diagnóstico en Salud Animal (CENASA).

                   - Manual de Sistema de Gestión Integral CNSADIM02.
                   - Manual de las Pruebas de Diagnóstico y de las Vacunas para los
                      Animales Terrestres . OIE Manual of Diagnostics Tests and
                      Vaccines for Terrestrial Animals (mammals, birds, and bees). 8th
                      edition, 2018 Capt. 3.1.17
                   - Eliminación de residuos (CNSATVP07).

                                                                                         49
Métodos Diagnósticos
    Demostración de un                                     Detección de ácido nucleico
                                                                    RT-PCR convencional
     componente viral:          Caracterización:                     PCR Tiempo Real

    Inmunofluorescencia (IF)     Secuenciación

     Aislamiento del
                                   Foto: CENASA, BSL-2
          virus
                                                         Detección de
           AVCC
                                                         anticuerpos
       Prueba Biológica         Constatación              (FAVN)

                                                                                           50
Lineamientos
Exposición con personas:

                                 Positivo                  Secuenciación

                           IFD   Procesamiento y emisión de resultado Inmediato

                                  Negativo                     PCR
                                                               AV

                                                                                  51
Caracterización

   ?
                                  SECUENCIAS DE
                                   REFERENCIA

    CPA
  CENASA
   LASD

                  SECUENCIACIÓN

                                     ANÁLISIS        Troupin et al., 2016
                                                  Venegas-Cureño et al., 2018
                                   FILOGÉNICO
                                                                                52
IF

 1958 Goldwasser and Kissling
       +, ++, +++, ++++

                    https://www.cdc.gov/rabies/diagnosis/direct_fluorescent_antibody.html
                                                                                            53
Técnica de oro

  +              -
                     54
Inmunofluorescencia directa

       1. Corte o impronta        3. Anticuerpo
                                  conjugado con FITC                    5. OBSERVACIÓN
       (Ag desconocido)
                                  (reactivo)
                                                                          Microscopio
                                                                          fondo oscuro-Luz
                                                                          UV
                                               Incubación

                 2. Fijado con acetona
                                                            4. Lavado

                                                                                             55
VENTAJAS                                  DESVENTAJAS

• Rápida, sencilla                   • Costo equipo
• Especificidad y sensibilidad del   • Lectura subjetiva
  96% al 99%

                                                           56
AISLAMIENTO VIRAL (INOCULACIÓN EN RATÓN)

•   Ratones 3-4 semanas
•   Inóculo: sobrenadante clarificado homogenado de
    material cerebral al 20%
•   Antibióticos
•   Observación 28 días

                                                      57
Aislamiento viral (prueba biológica)

El inóculo es el sobrenadante clarificado de un homogenado
                  de material cerebral al 20%

     1. Corte o impronta                           3. Anticuerpo
                                                   conjugado con FITC                    5. OBSERVACIÓN
      (Ag desconocido)
                                                   (reactivo)
                                                                                           Microscopio
                                                                                           fondo oscuro-Luz
                                                                                           UV
                                                                Incubación

                       2. Fijado con acetona
                                                                             4. Lavado        Controles
                                                                                                              58
RT- PCR

          59
Histopatología

• Cuerpos de Negri.

• Para las pruebas inmunohistoquímicas en muestras de encéfalo fresco o en cortes de tejido fijado en formalina
  también puede utilizarse conjugado de peroxidasa.

                                                                                                                  60
Diagnóstico serológico
Puede utilizarse para:

• Determinar si existen o no anticuerpos como correlación de la presencia del virus
• Anticuerpos maternos
• Evaluación de campaña de vacunación
• Monitorear la eficacia de la vacunación (Comercio internacional)
• Seroperfil: edad y etapa reproductiva

                                                                                      61
Métodos serológicos
SERONEUTRALIZACIÓN

                      62
Método
FAVN

• Examen de laboratorio para detectar y medir la
  cantidad de anticuerpos en el suero.

• Sueros Patrón.

• Utiliza cultivos celulares (células BHK21).

• Cuando hay anticuerpos en el suero, previenen la
  infección de los cultivos por el virus rábico (CVS).

                                                         63
Método
FAVN
• La lectura de las placas se realiza con el uso de un conjugado monoclonal marcados con un fluoróforo,
  el cual se adhiere a las células infectadas con el virus de la rabia.

• En la lectura se cuentan los pozos infectados, y se hace el cálculo del título de anticuerpos, el cual se
  expresa en UI/ml.

                                                                                                              64
Resultados
Si la mascota tiene un resultado satisfactorio (≥0,5 UI/ml) :
• Tiene un determinado tiempo para entrar al país de destino o revacunación en algunos
    casos.

Si la mascota tiene un resultado no satisfactorio (
Criterios

     https://sistemasssl.senasica.gob.mx/sinacertweb/pages/publico/consultaRequisitosExportacion.xhtml (GOB.MX - SENASICA.html)
                                                                                                                                  66
67
CENASA-LABORATORIO DE REFERENCIA PARA RABIA

                            Contactos:
             Dirección: Rogelio Estrada Rodriguez
                rogelio.estrada@senasica.gob.mx

                                                    68
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